| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-22页 |
| 1 盐胁迫对植物的影响与作用机理 | 第12-15页 |
| ·盐胁迫对植物形态发育的影响 | 第12-13页 |
| ·盐胁迫对植物生理生化代谢的影响 | 第13-14页 |
| ·盐胁迫对植物水分平衡与质膜透性的影响 | 第13页 |
| ·盐胁迫对植物光合作用的影响 | 第13页 |
| ·盐胁迫对植物呼吸作用的影响 | 第13-14页 |
| ·盐胁迫对植物物质代谢的影响 | 第14页 |
| ·盐胁迫的作用机理 | 第14-15页 |
| ·渗透势胁迫机制 | 第14页 |
| ·离子积累胁迫机制 | 第14-15页 |
| 2 植物抗盐机理 | 第15-18页 |
| ·形态性抗盐 | 第15-16页 |
| ·生理性抗盐 | 第16-18页 |
| ·渗透调节抗盐机制 | 第16-17页 |
| ·改变代谢抗盐机制 | 第17-18页 |
| ·维持膜结构抗盐机制 | 第18页 |
| ·拒盐和离子选择吸收抗盐机制 | 第18页 |
| 3 植物保护酶在植物逆境中的作用 | 第18-19页 |
| 4 RT-PCR技术原理与特点 | 第19-20页 |
| ·RT-PCR技术的操作流程程 | 第19-20页 |
| ·RT-PCR技术的优点与特性 | 第20页 |
| 5 本研究目的、内容与意义 | 第20-22页 |
| ·本研究目的 | 第20-21页 |
| ·本研究内容 | 第21页 |
| ·马铃薯试管苗盐胁迫处理 | 第21页 |
| ·盐胁迫处理后马铃薯试管苗生理生化指标的测定 | 第21页 |
| ·盐胁迫处理后马铃薯试管苗SOD相关基因表达量变化的测定 | 第21页 |
| ·本研究的意义 | 第21-22页 |
| 第二章 盐胁迫下马铃薯试管苗形态与生理生化指标的测定 | 第22-35页 |
| 1 材料与方法 | 第22-28页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·试剂与仪器 | 第22页 |
| ·实验试剂 | 第22页 |
| ·实验仪器 | 第22页 |
| ·试验方法 | 第22-28页 |
| ·盐胁迫浓度与方法 | 第22-23页 |
| ·马铃薯试管苗叶绿素含量的测定 | 第23-24页 |
| ·马铃薯试管苗根系长度的测定 | 第24页 |
| ·马铃薯试管苗鲜重的测定 | 第24页 |
| ·马铃薯试管苗POD活性的测定 | 第24-26页 |
| ·马铃薯试管苗SOD酶活性的测定 | 第26-28页 |
| ·马铃薯试管苗脯氨酸含量的测定 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-34页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗生长的影响 | 第29-30页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗叶绿素含量的影响 | 第30页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗鲜重的影响 | 第30-31页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗脯氨酸含量的影响 | 第31-32页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗SOD活性的影响 | 第32-33页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗POD活性的影响 | 第33页 |
| ·盐胁迫处理对马铃薯试管苗根系平均长度的影响 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-35页 |
| 第三章 马铃薯抗盐SOD相关基因表达量的测定 | 第35-45页 |
| 1 材料与方法 | 第35-39页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·实验试剂与器材 | 第35页 |
| ·实验试剂 | 第35页 |
| ·实验器材 | 第35页 |
| ·实验材料的处理 | 第35页 |
| ·马铃薯SOD相关基因序列信息的获取 | 第35-36页 |
| ·试验方法 | 第36-39页 |
| ·盐胁迫处理方法 | 第36页 |
| ·马铃薯试管苗总RNA的提取 | 第36页 |
| ·RNA逆转录cDNA | 第36-37页 |
| ·PCR扩增 | 第37-38页 |
| ·目的基因表达量的检测 | 第38-39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-43页 |
| ·SOD相关基因的获取 | 第39-41页 |
| ·RNA提取 | 第41页 |
| ·RNA逆转录cDNA | 第41-42页 |
| ·RT-PCR检测 | 第42-43页 |
| 3. 讨论 | 第43-45页 |
| 第四章 结论 | 第45-46页 |
| 1 盐胁迫下马铃薯的生长情况 | 第45页 |
| 2 盐胁迫下三个品种马铃薯生理生化指标的变化 | 第45页 |
| 3 SOD酶相关基因转录活性变化 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |