摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
英文缩略语 | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-31页 |
1 乙酰胆碱酯酶的研究进展 | 第11-17页 |
·乙酰胆碱酯酶概述 | 第11-13页 |
·昆虫中多个乙酰胆碱酯酶的存在 | 第13-16页 |
·乙酰胆碱酯酶的经典和非经典功能 | 第16-17页 |
2 RNA干扰的研究概况 | 第17-26页 |
·RNA干扰的研究历程及现状 | 第17-18页 |
·RNA干扰机制 | 第18-20页 |
·系统性RNA干扰 | 第20-24页 |
·RNA干扰的应用及展望 | 第24-26页 |
3 小菜蛾的研究简介 | 第26-28页 |
·小菜蛾的生物学特性 | 第26-27页 |
·小菜蛾的发生与为害特点 | 第27页 |
·小菜蛾的抗药性 | 第27-28页 |
4 本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
5 研究内容和研究路线 | 第29-31页 |
第二章 小菜蛾两个乙酰胆碱酯酶基因的RNA干扰 | 第31-37页 |
摘要 | 第31页 |
1 材料与方法 | 第31-33页 |
·试虫来源及饲养 | 第31-32页 |
·主要试剂和仪器 | 第32页 |
·小菜蛾siRNA序列 | 第32-33页 |
·活体显微注射 | 第33页 |
·注射后死亡率数据统计 | 第33页 |
2 结果与分析 | 第33-35页 |
·显微注射法将siRNA导入试虫体内 | 第33-34页 |
·siRNA导入试虫体内后死亡率分析 | 第34-35页 |
3 讨论 | 第35-37页 |
第三章 RNA干扰后小菜蛾乙酰胆碱酯酶基因的表达水平分析以及酶活力检测 | 第37-53页 |
摘要 | 第37-38页 |
1 材料与方法 | 第38-46页 |
·供试材料 | 第38页 |
·主要试剂和仪器 | 第38-39页 |
·总RNA提取和cDNA合成 | 第39-41页 |
·实时荧光定量PCR模板质量检测 | 第41-42页 |
·定量PCR引物 | 第42-44页 |
·小菜蛾ace基因的定量PCR分析 | 第44-45页 |
·小菜蛾乙酰胆碱酯酶活力测定 | 第45页 |
·统计方法 | 第45-46页 |
2 实验结果 | 第46-50页 |
·荧光定量PCR产物熔解曲线分析及扩增效率的一致性分析 | 第46-47页 |
·RNA干扰后目标基因mRNA的qRT-PCR检测 | 第47-48页 |
·RNA干扰后的乙酰胆碱酯酶活力分析 | 第48-50页 |
3 讨论 | 第50-53页 |
第四章 RNA干扰后小菜蛾的表型变化观察和行为学观察 | 第53-61页 |
摘要 | 第53-54页 |
1 实验方法 | 第54页 |
·取食行为实验 | 第54页 |
·小菜蛾表型观察、体长体重统计 | 第54页 |
2 结果与分析 | 第54-60页 |
·取食行为实验结果 | 第54-56页 |
·注射后不同时间体长体重统计分析 | 第56-59页 |
·注射后小菜蛾表型观察 | 第59-60页 |
3 讨论 | 第60-61页 |
第五章 RNA干扰后小菜蛾对有机磷农药及多杀菌素的敏感性 | 第61-69页 |
摘要 | 第61-62页 |
1 材料与方法 | 第62-64页 |
·供试材料 | 第62-63页 |
·主要试剂与仪器 | 第63页 |
·室内毒力测定方法 | 第63页 |
·酶活力测定方法 | 第63-64页 |
2 结果与分析 | 第64-67页 |
·干扰后小菜蛾对毒死蜱的敏感性 | 第64-65页 |
·干扰后小菜蛾对多杀菌素的敏感性 | 第65-67页 |
3 讨论 | 第67-69页 |
全文总结 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-81页 |
附录:攻读硕士学位期间学术论文的发表情况 | 第81-83页 |
致谢 | 第83页 |