| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 缩略语对照表 | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-16页 |
| 1.1 “良关系”药对 | 第12-13页 |
| 1.2 “组合中药分子化学”与“良关系化合物” | 第13-14页 |
| 1.3 “良关系”君使化合物DBZ的设计 | 第14页 |
| 1.4 主要研究内容及意义 | 第14-16页 |
| 第二章 DBZ抑制LPS诱导的BV-2小胶质细胞活化的作用研究 | 第16-31页 |
| 2.1 实验背景 | 第16-18页 |
| 2.1.1 小胶质细胞与神经炎症 | 第16-17页 |
| 2.1.2 DBZ的药理研究 | 第17-18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.1 细胞株 | 第18页 |
| 2.2.2 实验试剂与仪器 | 第18-19页 |
| 2.3 试剂的配制与细胞基本操作 | 第19页 |
| 2.3.1 DMEM高糖完全培养基配制 | 第19页 |
| 2.3.2 细胞冻存液配制 | 第19页 |
| 2.3.3 LPS溶液的配制 | 第19页 |
| 2.3.4 DBZ的溶液配制 | 第19页 |
| 2.3.5 细胞培养、传代及处理 | 第19页 |
| 2.3.6 细胞冻存 | 第19页 |
| 2.4 MTT细胞增殖实验 | 第19-20页 |
| 2.4.1 LPS对BV-2小胶质细胞活力影响的考察 | 第19-20页 |
| 2.4.2 DBZ对BV-2小胶质细胞活力影响的考察 | 第20页 |
| 2.5 Griess法检测DBZ对LPS诱导BV-2小胶质细胞NO释放的影响 | 第20页 |
| 2.6 ELISA法检测DBZ对LPS诱导BV-2小胶质细胞TNF-α释放影响 | 第20-21页 |
| 2.7 蛋白质印迹法 | 第21-22页 |
| 2.7.1 工作液的配制 | 第21页 |
| 2.7.2 SDS-PAGE凝胶的配制 | 第21页 |
| 2.7.3 细胞总蛋白的制备 | 第21-22页 |
| 2.7.4 蛋白质电泳 | 第22页 |
| 2.7.5 蛋白质印迹 | 第22页 |
| 2.8 实验结果 | 第22-29页 |
| 2.8.1 LPS诱导BV-2小胶质细胞模型的建立与评价 | 第22-24页 |
| 2.8.2 LPS对BV-2小胶质细胞形态学的影响 | 第24-25页 |
| 2.8.3 DBZ对LPS诱导的BV-2小胶质细胞NO释放的影响 | 第25-26页 |
| 2.8.4 DBZ对LPS诱导的BV-2小胶质细胞TNF-α释放的影响 | 第26-27页 |
| 2.8.5 DBZ对LPS诱导的小胶质细胞iNOS表达的影响 | 第27-28页 |
| 2.8.6 DBZ对LPS诱导的小胶质细胞MMP-9表达的影响 | 第28页 |
| 2.8.7 DBZ对LPS诱导的小胶质细胞Erk1/2通路的影响 | 第28-29页 |
| 2.9 分析与讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 QXs的设计与合成研究 | 第31-41页 |
| 3.1 实验背景 | 第31-34页 |
| 3.1.1 亚精胺 | 第31-32页 |
| 3.1.2 丹参素 | 第32-33页 |
| 3.1.3 “良关系”相须气血化合物QXs的设计 | 第33-34页 |
| 3.2 实验仪器与试剂 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.3.1 合成路线 | 第35-36页 |
| 3.3.2 合成反应监测 | 第36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 第四章 总结与展望 | 第41-43页 |
| 附件 丹参-红花在正常大鼠血浆代谢研究 | 第43-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
