| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 1 引言 | 第15-34页 |
| ·植物黄酮的研究概述 | 第15-22页 |
| ·黄酮类化合物的结构 | 第15-16页 |
| ·黄酮类化合物的提取 | 第16-18页 |
| ·黄酮类化合物的分离、纯化 | 第18-19页 |
| ·定性鉴定 | 第19页 |
| ·黄酮类化合物的生物活性 | 第19-22页 |
| ·梧桐花黄酮的研究进展 | 第22-23页 |
| ·多糖的研究概述 | 第23-24页 |
| ·多糖的来源 | 第24-25页 |
| ·多糖的生物学活性 | 第25-27页 |
| ·多糖的免疫药理作用 | 第25-26页 |
| ·多糖的抗肿瘤活性 | 第26页 |
| ·多糖的抗病毒活性 | 第26-27页 |
| ·多糖的抗氧化衰老活性 | 第27页 |
| ·多糖的结构与功效 | 第27-30页 |
| ·多糖一级结构与其活性的关系 | 第28-29页 |
| ·多糖的高级结构与其活性的关系 | 第29-30页 |
| ·多糖活性中心与其活性的关系 | 第30页 |
| ·多糖的开发现状 | 第30-32页 |
| ·云芝多糖 | 第30-31页 |
| ·香菇多糖 | 第31页 |
| ·茯苓多糖 | 第31页 |
| ·多糖项目开发 | 第31页 |
| ·多糖在医药领域的应用 | 第31-32页 |
| ·多糖的提取与纯化 | 第32-34页 |
| ·多糖的提取 | 第32-33页 |
| ·多糖的纯化 | 第33页 |
| ·多糖的检测 | 第33-34页 |
| ·本研究目的及意义 | 第34页 |
| 2 材料和方法 | 第34-42页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·菌种 | 第34页 |
| ·病毒 | 第34页 |
| ·试验动物及生物制剂 | 第34-35页 |
| ·主要化学试剂 | 第35页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·方法 | 第35-42页 |
| ·梧桐花黄酮提取 | 第35页 |
| ·梧桐花多糖提取方法 | 第35-36页 |
| ·梧桐花多糖检测方法 | 第36页 |
| ·抑菌试验方法 | 第36-37页 |
| ·抗病毒试验方法 | 第37-38页 |
| ·梧桐花多糖提取工艺参数设计 | 第38页 |
| ·梧桐花多糖对新城疫疫苗的免疫增强作用 | 第38-40页 |
| ·梧桐花多糖对支气管败血波氏杆菌灭活苗的免疫增强作用 | 第40-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-60页 |
| ·抑菌试验结果 | 第42-44页 |
| ·打孔法测定抑菌效果 | 第42-43页 |
| ·最小抑菌浓度的测定 | 第43-44页 |
| ·抗病毒试验结果 | 第44-47页 |
| ·梧桐花总黄酮体外抗 IBDV 和 NDV 试验结果 | 第44-47页 |
| · | 第47-50页 |
| ·梧桐花多糖提取料液比的确定 | 第47-48页 |
| ·梧桐花多糖提取温度的确定 | 第48-49页 |
| ·梧桐花多糖提取时间的确定 | 第49页 |
| ·梧桐花多糖提取 PH 值的确定 | 第49-50页 |
| ·梧桐花多糖对新城疫疫苗的免疫增强作用 | 第50-55页 |
| ·血清中抗体效价的变化 | 第50-52页 |
| ·小鼠淋巴细胞比率的变化 | 第52-53页 |
| ·小鼠淋巴细胞数的变化 | 第53-54页 |
| ·小鼠淋巴细胞转化率的变化 | 第54-55页 |
| ·梧桐花多糖对支气管败血波氏杆菌的免疫增强作用 | 第55-60页 |
| ·小鼠血清支气管败血波氏杆菌抗体效价的变化 | 第55-56页 |
| ·小鼠淋巴细胞数的变化 | 第56-57页 |
| ·小鼠淋巴细胞比率的变化 | 第57-58页 |
| ·小鼠脾脏淋巴细胞转化率的变化 | 第58-59页 |
| ·小鼠小肠内 IGA 含量的变化 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-65页 |
| ·梧桐花总黄酮抑菌及抗病毒作用 | 第60-61页 |
| ·梧桐花多糖提取工艺的优化 | 第61页 |
| ·梧桐花多糖对新城疫疫苗的免疫增强作用 | 第61-63页 |
| ·梧桐花多糖对支气管败血波氏杆菌灭活苗的免疫增强作用 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简介 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-78页 |
