| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-27页 |
| ·植物叶片衰老的机理、影响因素和延衰方法 | 第12-16页 |
| ·植物叶片衰老的机理 | 第12-13页 |
| ·影响因素 | 第13-15页 |
| ·延缓植物衰老的方法 | 第15-16页 |
| ·细胞分裂素的研究概况 | 第16-18页 |
| ·细胞分裂素的合成 | 第16-17页 |
| ·细胞分裂素延缓衰老的研究进展 | 第17-18页 |
| ·细胞分裂素响应基因的研究进展 | 第18页 |
| ·异戊烯基转移酶基因的研究进展 | 第18-23页 |
| ·异戊烯基转移酶的简介 | 第18-19页 |
| ·异戊烯基转移酶基因的表达与启动子的选择 | 第19-20页 |
| ·转异戊烯基转移酶基因的植物研究进展 | 第20-22页 |
| ·异戊烯基转移酶基因转入植物的作用 | 第22-23页 |
| ·Solexa 测序研究进展 | 第23-25页 |
| ·Solexa 测序的原理 | 第23页 |
| ·Solexa 测序的流程 | 第23-24页 |
| ·Solexa 测序的优势 | 第24页 |
| ·Solexa 测序的应用 | 第24-25页 |
| ·本研究的立题依据与研究意义 | 第25-27页 |
| 2 材料和方法 | 第27-36页 |
| ·材料与试剂 | 第27-28页 |
| ·植物材料 | 第27页 |
| ·主要试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器 | 第27页 |
| ·实验用的引物 | 第27-28页 |
| ·方法 | 第28-36页 |
| ·植物材料的准备 | 第28-29页 |
| ·植物总 RNA 的提取 | 第29-31页 |
| ·文库构建和 Solexa 测序 | 第31-32页 |
| ·测序数据分析 | 第32-33页 |
| ·差异表达基因的筛选 | 第33页 |
| ·途径显著性富集分析 | 第33-34页 |
| ·Gene Ontology（GO）功能显著性富集分析 | 第34页 |
| ·实时荧光定量 PCR | 第34-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-56页 |
| ·RNA 提取质量检测 | 第36-37页 |
| ·Solexa 测序结果分析 | 第37-41页 |
| ·tag 整体质量分析 | 第37页 |
| ·Tag 拷贝数分布统计 | 第37-38页 |
| ·tag 比对结果 | 第38-40页 |
| ·测序的饱和度分析 | 第40-41页 |
| ·差异表达基因的筛选 | 第41-45页 |
| ·参与细胞分裂素信号转导的差异表达基因 | 第43-44页 |
| ·参与转录调控的差异表达基因 | 第44页 |
| ·参与其他植物激素信号转导的差异表达基因 | 第44-45页 |
| ·参与其他代谢途径的差异表达基因 | 第45页 |
| ·实时荧光定量 PCR 验证分析 | 第45-49页 |
| ·途径显著性富集分析 | 第49-55页 |
| ·黄酮和黄酮醇合成途径 | 第49-50页 |
| ·精氨酸和脯氨酸代谢途径 | 第50-53页 |
| ·乙醛酸盐代谢途径 | 第53-54页 |
| ·真核 RNA 降解途径 | 第54-55页 |
| ·Gene Ontology 显著性富集分析 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| ·棉花衰老叶片 RNA 的提取 | 第56页 |
| ·测序数据的讨论 | 第56-57页 |
| ·细胞分裂素响应的差异表达基因 | 第57页 |
| ·差异表达基因的途径显著性富集分析 | 第57页 |
| ·进一步研究设想 | 第57-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第70页 |