| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 1 引言 | 第10-25页 |
| ·叶绿体的起源学说 | 第10-12页 |
| ·内共生起源学说 | 第10-11页 |
| ·非共生起源学说 | 第11-12页 |
| ·拟南芥叶绿体基因组的结构和表达调控 | 第12-16页 |
| ·拟南芥叶绿体基因组结构 | 第12-14页 |
| ·叶绿体基因的转录 | 第14-15页 |
| ·叶绿体基因的转录后加工 | 第15-16页 |
| ·PPR 蛋白家族 | 第16-21页 |
| ·PPR 家族蛋白的特点 | 第17-18页 |
| ·拟南芥 PPR 家族蛋白的分类 | 第18-20页 |
| ·PPR 家族蛋白的功能 | 第20-21页 |
| ·拟南芥 PPR 蛋白 PDM1 的研究进展 | 第21-24页 |
| ·本实验室之前的研究结果 | 第21-24页 |
| ·PDM1 缺失突变体的表型及 PDM1 蛋白亚细胞定位 | 第21-23页 |
| ·PDM1 影响到了拟南芥叶绿体 rpoA 前体 mRNA 的加工 | 第23-24页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 2 材料和方法 | 第25-45页 |
| ·材料 | 第25-27页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·菌株和质粒 | 第25-26页 |
| ·抗生素 | 第26页 |
| ·培养基配方 | 第26页 |
| ·其他 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-45页 |
| ·拟南芥种植，转染与转基因植株的筛选 | 第27-29页 |
| ·拟南芥无菌培养 | 第27-28页 |
| ·拟南芥土壤种植和拟南芥转染 | 第28页 |
| ·拟南芥转基因植株的筛选 | 第28-29页 |
| ·感受态的制备，转化与转化子的鉴定 | 第29-31页 |
| ·热击 E.coli 感受态的制备 | 第29-30页 |
| ·大肠杆菌的转化 | 第30页 |
| ·质粒的小量制备 | 第30页 |
| ·PCR 鉴定体系及酶切鉴定体系 | 第30-31页 |
| ·农杆菌感受态的制备，转化 | 第31-32页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备 | 第31页 |
| ·农杆菌的遗传转化 | 第31-32页 |
| ·载体构建 | 第32页 |
| ·DNA 和 RNA 的抽取 | 第32-33页 |
| ·DNA 的抽取 | 第32-33页 |
| ·RNA 的抽取 | 第33页 |
| ·Northern blot | 第33-36页 |
| ·Dig 探针的制备： | 第33页 |
| ·RNA 甲醛变性凝胶电泳 | 第33-34页 |
| ·RNA 甲醛变性胶转膜 | 第34页 |
| ·预杂交和杂交 | 第34页 |
| ·洗膜，封闭与显影检测 | 第34-36页 |
| ·Western blot | 第36-39页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第37页 |
| ·样品的印迹（转膜） | 第37-38页 |
| ·免疫反应 | 第38-39页 |
| ·RNA 免疫共沉淀技术（RIP） | 第39-43页 |
| ·拟南芥幼苗的种植和固定 | 第39-40页 |
| ·特定的 RNA 蛋白复合物的免疫沉淀反应 | 第40-43页 |
| ·蛋白质免疫共沉淀技术（Co-IP） | 第43-45页 |
| 3 结果和讨论 | 第45-56页 |
| ·拟南芥 PDM1 基因编码一个 PLS 亚家族蛋白 | 第45-46页 |
| ·拟南芥 PDM1 蛋白的缺失影响 PEP 活性 | 第46-47页 |
| ·pdm1-1 突变体中 rpoA 前体 mRNA 的加工缺陷导致 RpoA 蛋白的积累减少 | 第47-49页 |
| ·PDM1-FLAG 转基因植株的筛选和互补鉴定 | 第49-50页 |
| ·PDM1 蛋白与 rpoA 多顺反子转录本相结合 | 第50-51页 |
| ·叶绿体内其他多顺反子转录模式的检测 | 第51-52页 |
| ·与 PDM1 相互作用的其他蛋白质的检测 | 第52页 |
| ·讨论 | 第52-55页 |
| ·拟南芥 PDM1 蛋白对叶绿体发育具有重要作用 | 第53-54页 |
| ·PDM1 参与了 rps11-rpoA 之间的核酸内切过程 | 第54-55页 |
| ·展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 已发表论文 | 第61页 |
