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mPem蛋白在大肠杆菌中的表达、纯化及其抗血清的制备

中文摘要第1-6页
Abstract第6-11页
前言第11-17页
 第一部分 同源异型框基因(homeobox genes)简介第11页
 第二部分 Pem基因研究进展第11-16页
  (一) Pem的发现及命名第11页
  (二) Pem基因是一个同源异型框基因第11-12页
  (三) Pem基因的结构及调控第12-13页
  (四) Pem基因的表达及其产物的功能第13-15页
  (五) 与Pem蛋白相互作用的分子第15-16页
 第三部分 本课题的基本思路第16页
 第四部分 实验技术路线简图第16-17页
实验部分第17-42页
 第一部分 实验材料第17-24页
  1.主要实验仪器设备第17-18页
  2 主要试剂第18-24页
 第二部分 实验方法第24-42页
  1.生物信息学分析mPem cDNA序列的密码子组成第24页
  2.构建原核表达载体pET22b(+)~mPem第24-31页
   ·mPem基因cDNA序列的PCR扩增及双酶切第24-27页
   ·pET22b(+)质粒的氯霉素扩增、抽提及双酶切第27-28页
   ·双酶切片段的连接第28页
   ·E.coli DH5 a感受态细胞的制备第28-29页
   ·连接液转化E.coli DH5 a感受态细胞第29-30页
   ·pET22b(+)-mPem重组子的筛选与鉴定第30-31页
  3.mPem-6His蛋白的在重组菌中的诱导表达第31-37页
   ·重组菌的生长曲线第31-33页
     ·pET22b(+)-mPem/pET22b(+)质粒转化大肠杆菌Rosetta ~(TM)2(DE3)第32-33页
     ·重组菌的生长曲线第33页
   ·mPem-6His蛋白在重组菌中的诱导表达第33-36页
   ·IPTG诱导时间的筛选第36页
   ·诱导时机的选择第36-37页
   ·诱导剂IPTG的用量第37页
  4.mPem-6His蛋白的Ni~(2+)亲和纯化第37-40页
   ·mPem-6His蛋白的溶解性第37-38页
   ·mPem-6His蛋白的小批量纯化第38-39页
   ·mPem-6His蛋白的柱纯化第39-40页
  5.多克隆抗血清的制备第40-42页
   ·多克隆抗血清的制备第40-41页
   ·多克隆抗血清的特异性第41-42页
实验结果第42-52页
 1.生物信息学分析mPem cDNA序列的密码子组成第42-43页
 2.原核表达质粒pET22b(+)-mPem的构建第43-45页
 3.mPem-6His蛋白在重组菌中的诱导表达第45-48页
   ·重组菌的生长曲线第45-46页
   ·mPem-6His蛋白在重组菌中的诱导表达第46页
   ·IPTG诱导时间的筛选第46-47页
   ·诱导时机的选择第47-48页
   ·诱导剂IPTG的用量第48页
 4.mPem-6His蛋白的Ni~(2+)亲和纯化第48-50页
   ·mPem-6His蛋白的溶解性第48-49页
   ·mPem-6His蛋白的小批量纯化第49-50页
   ·mPem-6His蛋白的柱纯化第50页
 5.多克隆抗血清的制备第50-52页
   ·多克隆抗血清的制备第50-51页
   ·多克隆抗血清的特异性第51-52页
讨论第52-55页
 1.蛋白表达系统的选择第52-54页
   ·原核表达载体的选择第52页
   ·大肠杆菌表达菌株的选择第52-54页
 2.多克隆抗体的制备第54页
 3.多克隆抗体的应用第54-55页
小结第55-56页
参考文献第56-59页
附录第59-64页
 附录1 大肠杆菌的密码子使用表第59-60页
 附录2 Genebank公布的mPem的基因全序列第60-62页
 附录3 pET22b(+)-mPem重组子的测序报告第62-63页
 附录4:mPem-6His蛋白在大肠杆菌BL21中的诱导表达第63-64页
攻读硕士学位期间参与发表的论文第64-65页
致谢第65页

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