| 第一章 绪论 | 第1-22页 |
| ·柚子主要成分介绍 | 第12-15页 |
| ·柚子中各活性成分研究 | 第15-20页 |
| ·柚子中各活性成分的应用研究 | 第15-16页 |
| ·果胶制备工艺研究 | 第16-19页 |
| ·果胶提取工艺研究 | 第16-18页 |
| ·果胶液脱色工艺研究 | 第18页 |
| ·果胶液分离工艺研究 | 第18-19页 |
| ·生物类黄酮的制备工艺研究 | 第19-20页 |
| ·生物类黄酮的提取研究 | 第19-20页 |
| ·生物类黄酮的分离纯化研究 | 第20页 |
| ·本课题研究的目的，意义和主要研究内容 | 第20-22页 |
| ·本课题研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| ·主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 柚子中生物类黄酮和果胶的测定方法研究 | 第22-40页 |
| ·柚子中柚皮甙和橙皮甙的反相高效液相色谱测定研究 | 第22-33页 |
| ·基本原理 | 第22-23页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第23-24页 |
| ·试验方法 | 第24页 |
| ·标准溶液的配制 | 第24页 |
| ·柚皮甙和橙皮甙的反相高效液相色谱测定 | 第24页 |
| ·结果与讨论 | 第24-30页 |
| ·固定相对分析的影响 | 第24页 |
| ·流动相对分离效果的影响 | 第24-26页 |
| ·流动相酸度对分析的影响 | 第26-27页 |
| ·流动相流速对分析的影响 | 第27-29页 |
| ·进样量对分析的影响 | 第29页 |
| ·最佳色谱条件的选择 | 第29-30页 |
| ·反相高效液相色谱法对柚皮甙和橙皮甙的定性和定量分析 | 第30-32页 |
| ·仪器参数及工作条件的设置 | 第30页 |
| ·定性分析 | 第30页 |
| ·标准曲线 | 第30-31页 |
| ·回收率试验 | 第31-32页 |
| ·样品含量测定 | 第32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| ·生物类黄酮的分光光度法测定研究 | 第33-35页 |
| ·基本原理 | 第33页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第33-34页 |
| ·试验方法 | 第34页 |
| ·柚皮甙对照品溶液的制备 | 第34页 |
| ·总黄酮的分光光度法测定 | 第34页 |
| ·吸收光谱曲线和最大吸收波长的测定 | 第34-35页 |
| ·标准曲线的建立 | 第35页 |
| ·果胶的分光光度法测定研究 | 第35-39页 |
| ·基本原理 | 第36页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第36-37页 |
| ·试验方法 | 第37页 |
| ·吸收光谱曲线和最大吸收波长的测定 | 第37页 |
| ·标准曲线的制作 | 第37-38页 |
| ·标准溶液的配制 | 第37-38页 |
| ·标准曲线的建立 | 第38页 |
| ·样品测定 | 第38-39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 柚皮中果胶浸取工艺研究 | 第40-48页 |
| ·前言 | 第40页 |
| ·基本原理 | 第40-42页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·样品处理 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-47页 |
| ·不同的无机酸对果胶提取的影响 | 第43页 |
| ·提取液酸度对果胶提取的影响 | 第43页 |
| ·提取过程中提取温度对果胶提取的影响 | 第43-44页 |
| ·提取时间对果胶提取的影响 | 第44-45页 |
| ·液固比对果胶提取的影响 | 第45页 |
| ·最优提取条件选择 | 第45-47页 |
| ·本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 果胶液脱色和果胶分离工艺研究 | 第48-62页 |
| ·前言 | 第48页 |
| ·果胶液脱色工艺研究 | 第48-53页 |
| ·树脂脱色基本原理 | 第48页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第48-49页 |
| ·果胶脱色的实验方法 | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-53页 |
| ·色素的吸收光度曲线 | 第49-50页 |
| ·树脂选择 | 第50页 |
| ·果胶液的酸度对树脂AB-8脱色效果的影响 | 第50-51页 |
| ·温度对脱色效果的影响 | 第51-52页 |
| ·AB-8树脂用量对树脂AB-8脱色效果的影响 | 第52-53页 |
| ·振荡时间对脱色效果的影响 | 第53页 |
| ·乙醇沉淀果胶工艺研究 | 第53-56页 |
| ·基本原理 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54页 |
| ·沉淀工艺结果与讨论 | 第54-56页 |
| ·果胶液浓度对果胶醇沉的影响 | 第54-55页 |
| ·乙醇浓度对果胶沉淀的影响 | 第55页 |
| ·沉析过程中酸度对沉淀的影响 | 第55-56页 |
| ·沉淀时间对果胶沉淀率的影响 | 第56页 |
| ·喷雾干燥法制备果胶工艺研究 | 第56-58页 |
| ·基本原理 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57页 |
| ·果胶制备 | 第57-58页 |
| ·乙醇沉淀-真空干燥制备果胶工艺与喷雾干燥工艺比较 | 第58-61页 |
| ·工艺流程比较 | 第58页 |
| ·产品生产成本比较 | 第58页 |
| ·产品质量比较 | 第58-60页 |
| ·灰分的测定 | 第58-59页 |
| ·半乳糖醛酸(G.A)含量的测定 | 第59页 |
| ·胶凝度测定 | 第59-60页 |
| ·红外光谱分析 | 第60-61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 第五章 柚皮中生物类黄酮的浸取研究 | 第62-69页 |
| ·前言 | 第62页 |
| ·材料与方法 | 第62-63页 |
| ·材料 | 第62-63页 |
| ·试验方法 | 第63页 |
| ·有机溶剂条件的优化 | 第63页 |
| ·柚皮浸取液中生物类总黄酮的测定 | 第63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-68页 |
| ·生物类黄酮提取溶剂的选择 | 第63页 |
| ·乙醇浓度对黄酮提取效果的影响 | 第63-64页 |
| ·提取时间对黄酮提取效果的影响 | 第64页 |
| ·提取溶剂酸度对黄酮提取效果的影响试验 | 第64-65页 |
| ·提取温度对黄酮提取效果的影响 | 第65页 |
| ·液固比对黄酮提取效果的影响试验 | 第65-66页 |
| ·乙醇提取黄酮的正交试验 | 第66-67页 |
| ·黄酮提取次数条件试验 | 第67-68页 |
| ·柚皮浸取液的脱脂 | 第68页 |
| ·本章小结 | 第68-69页 |
| 第六章 柚皮中生物类黄酮的分离纯化工艺研究 | 第69-84页 |
| ·基本原理 | 第69-70页 |
| ·材料与仪器 | 第70-71页 |
| ·原料与试剂 | 第70-71页 |
| ·仪器 | 第71页 |
| ·试验方法 | 第71-73页 |
| ·大孔吸附树脂的选择 | 第71-72页 |
| ·大孔吸附树脂的静态吸附试验 | 第72页 |
| ·树脂的静态洗脱试验 | 第72页 |
| ·大孔吸附树脂的动态吸附试验 | 第72页 |
| ·大孔吸附树脂的动态洗脱试验 | 第72-73页 |
| ·结果与分析 | 第73-81页 |
| ·大孔吸附树脂的选择 | 第73-74页 |
| ·吸附等温线的测定 | 第74-75页 |
| ·X-5树脂对黄酮的静态吸附曲线 | 第75页 |
| ·提取液性质对树脂吸附的影响 | 第75-77页 |
| ·提取液浓度对树脂吸附的影响 | 第75-76页 |
| ·提取液酸度对树脂吸附的影响 | 第76-77页 |
| ·温度对树脂吸附的影响 | 第77页 |
| ·静态吸附最佳解吸条件的确定 | 第77-79页 |
| ·洗脱剂的选择和沈脱剂浓度对洗脱率的影响 | 第77-78页 |
| ·酸度对黄酮的洗脱率的影响 | 第78-79页 |
| ·树脂上吸附杂质的沈脱 | 第79页 |
| ·树脂动态吸附和洗脱试验 | 第79-81页 |
| ·吸附时最佳的溶液流速的确定 | 第79-80页 |
| ·流速对洗脱率的影响 | 第80-81页 |
| ·树脂使用次数对吸附的影响 | 第81页 |
| ·生物类黄酮的制备和分析 | 第81-83页 |
| ·生物类黄酮的制备 | 第81-82页 |
| ·生物类黄酮分析 | 第82-83页 |
| ·生物类黄酮总含量测定 | 第82页 |
| ·柚皮甙含量测定 | 第82页 |
| ·紫外光谱分析 | 第82页 |
| ·化学显色反应 | 第82-83页 |
| ·本章小结 | 第83-84页 |
| 第七章 总结 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-91页 |
| 致谢 | 第91页 |