| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 前言 | 第7-9页 |
| 第一章 耐盐苜蓿品种初步筛选 | 第9-15页 |
| 1 材料与方法 | 第9-11页 |
| ·实验材料 | 第9页 |
| ·试剂和仪器 | 第9页 |
| ·实验方法 | 第9-11页 |
| ·盐处理 | 第9-10页 |
| ·盐溶液电导率的测定 | 第10-11页 |
| 2 结果与讨论 | 第11-14页 |
| ·种子萌发期耐盐性 | 第11页 |
| ·成株的耐盐性 | 第11-14页 |
| 3 结论 | 第14-15页 |
| 第二章 耐盐苜蓿愈伤组织诱导效率 | 第15-20页 |
| 1 材料与方法 | 第15页 |
| ·外植体 | 第15页 |
| ·诱导培养基 | 第15页 |
| 2 结果与讨论 | 第15-19页 |
| ·中苜一号 | 第15-17页 |
| ·甘农二号 | 第17-18页 |
| ·游客和普拉多 | 第18页 |
| ·生长调节物质 | 第18-19页 |
| 3 结论 | 第19-20页 |
| 第三章 苜蓿转化受体再生系统的建立 | 第20-25页 |
| 1 目的 | 第20页 |
| 2 苜蓿离体再生系统的建立 | 第20-21页 |
| ·材料与方法 | 第20-21页 |
| ·苜蓿品种 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-21页 |
| 3 结果与讨论 | 第21-24页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第21页 |
| ·愈伤组织的分化 | 第21-23页 |
| ·玻璃化 | 第23页 |
| ·激素 | 第23页 |
| ·诱导生根及移栽 | 第23-24页 |
| 4 结论 | 第24-25页 |
| 第四章 根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)介导转化过程的优化 | 第25-32页 |
| 1 抗生素的使用 | 第25-27页 |
| ·卡那霉素(Km)有效工作浓度 | 第25-27页 |
| ·Km浓度对种子萌发的影响 | 第25-26页 |
| ·Km浓度对于愈伤组织形成和发育的影响 | 第26-27页 |
| ·羧苄青霉素在植株转化过程中的有效工作浓度 | 第27页 |
| 2 浸染 | 第27-28页 |
| ·浸染时间 | 第27-28页 |
| ·AS等诱导物质 | 第28页 |
| 3 预培养 | 第28-29页 |
| 4 共培养 | 第29-30页 |
| 5 消毒剂 | 第30-31页 |
| 6 讨论与结论 | 第31-32页 |
| 第五章 酵母GPDH基因表达载体的构建及其根癌农杆菌转化 | 第32-36页 |
| 1 材料与方法 | 第32-35页 |
| ·材料 | 第32-33页 |
| ·菌株和质粒 | 第32页 |
| ·酶与试剂盒 | 第32-33页 |
| ·引物和测序 | 第33页 |
| ·试剂 | 第33页 |
| ·方法 | 第33-35页 |
| ·载体pCAMBIA2301G的构建过程 | 第33页 |
| ·载体pCAMBIA2301G-GPDH的构建 | 第33页 |
| ·CaCl_2法制备大肠杆菌感受态细胞及转化 | 第33页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第33-34页 |
| ·用PCR(Polymerase Chain Reaction)法检测连接子 | 第34-35页 |
| 2 结果与分析 | 第35页 |
| ·载体pCAMBIA2301G和载体pCAMBIA2301G-GPDH的构建检测与分析 | 第35页 |
| ·根癌农杆菌的转化 | 第35页 |
| 3 讨论与结论 | 第35-36页 |
| 第六章 紫花苜帮(Medicago sativa L.)植株转化 | 第36-39页 |
| 1 材料与方法 | 第36-38页 |
| ·农杆菌的活化 | 第36-37页 |
| ·LB培养基 | 第36页 |
| ·农杆菌的活化 | 第36-37页 |
| ·外植体 | 第37页 |
| ·转化过程 | 第37页 |
| ·愈伤诱导及分化 | 第37页 |
| ·再生苗的移栽 | 第37-38页 |
| 2 讨论与结论 | 第38-39页 |
| 文献综述 | 第39-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| English abstract | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附图 | 第60-61页 |
