| 常用缩写词中英文对照 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| HCV细胞培养系统及动物模型研究进展 | 第16-29页 |
| 材料和方法 | 第29-52页 |
| 1 主要仪器及试剂 | 第29-34页 |
| 2 实验方法 | 第34-52页 |
| ·pEF-HCV core重组载体的构建及制备 | 第34-44页 |
| ·HCV C区基因在SP2／0细胞中的表达 | 第44-49页 |
| ·表达HCV C蛋白的小鼠浆细胞瘤模型的建立 | 第49-50页 |
| ·在免疫小鼠中检测抗-HCV | 第50-51页 |
| ·统计分析 | 第51-52页 |
| 结果 | 第52-60页 |
| 1 pEF-HCV core重组载体的鉴定及定量 | 第52-54页 |
| 2 HCV C区基因在SP2／0中的表达 | 第54-57页 |
| ·形态学检查 | 第54-56页 |
| ·斑点杂交检测HCV mRNA | 第56-57页 |
| ·免疫组化检测HCV core抗原的表达 | 第57页 |
| 3.“类HCV小鼠模型”的建立 | 第57-59页 |
| ·“类HCV小鼠模型”代表样本 | 第57页 |
| ·接种SP2/0转染子后不同时间内小鼠模型负荷肿瘤的情况 | 第57-58页 |
| ·瘤组织免疫组化染色结果 | 第58-59页 |
| 4.小鼠血清抗-HCV检测 | 第59-60页 |
| 讨论 | 第60-69页 |
| 1.pEF-HCV core重组载体的鉴定及定量分析 | 第60-62页 |
| 2.HCV C区基因在真核细胞中的表达 | 第62-64页 |
| 3.HCV C区基因在小鼠浆细胞瘤中的表达 | 第64-66页 |
| 4.小鼠对pEF—HCV core重组载体的特异性抗体反应 | 第66-69页 |
| 小结 | 第69-70页 |
| 结束语 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-85页 |
| 附录 | 第85-89页 |
