| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| ·水稻转化受体系统的研究 | 第12-13页 |
| ·原生质体再生系统 | 第12页 |
| ·愈伤组织再生系统 | 第12-13页 |
| ·直接分化再生系统 | 第13页 |
| ·生殖细胞受体系统 | 第13页 |
| ·水稻转化方法的研究进展 | 第13-15页 |
| ·PEG法 | 第13页 |
| ·电激法 | 第13-14页 |
| ·基因枪轰击法 | 第14页 |
| ·农杆菌介导法 | 第14页 |
| ·花粉管通道法 | 第14-15页 |
| ·农杆菌介导基因转化的研究进展 | 第15-17页 |
| ·农杆菌转化的原理 | 第15页 |
| ·农杆菌转化水稻研究进展 | 第15-16页 |
| ·影响农杆菌介导遗传转化的因素研究 | 第16-17页 |
| ·抗盐基因工程研究与进展 | 第17-21页 |
| ·导入或改良效应分子基因 | 第17-20页 |
| ·改良或增强调控分子基因 | 第20页 |
| ·关于HALl基因 | 第20-21页 |
| ·本研究的目的、意义 | 第21-22页 |
| 第二章 宁夏粳稻成熟胚离体再生体系的建立 | 第22-35页 |
| ·材料与方法 | 第22-24页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-32页 |
| ·宁夏粳稻成熟胚愈伤组织的诱导与分化 | 第24-25页 |
| ·不同基因型对宁夏粳稻成熟胚培养的影响 | 第25-27页 |
| ·基本培养基与基因型对宁夏粳稻成熟胚愈伤组织诱导和分化的影响 | 第27页 |
| ·2,4-D浓度对宁夏粳稻愈伤组织诱导和分化的影响 | 第27-29页 |
| ·激素配比对宁夏粳稻愈伤组织诱导和分化的影响 | 第29页 |
| ·蔗糖质量浓度对宁夏粳稻愈伤组织诱导和分化的影响 | 第29-30页 |
| ·不同糖源对宁夏粳稻成熟胚愈伤组织诱导和分化的影响 | 第30-31页 |
| ·激素处理对宁夏粳稻愈伤组织分化的影响 | 第31页 |
| ·不同继代处理对愈伤组织分化的影响 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-35页 |
| 第三章 宁夏粳稻花药组织离体培养与再生 | 第35-46页 |
| ·材料与方法 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-44页 |
| ·宁夏粳稻花药愈伤组织的诱导与分化 | 第37页 |
| ·宁夏粳稻花药不同基因型品种培养研究 | 第37-39页 |
| ·不同培养基对水稻花药培养的影响 | 第39页 |
| ·不同激素浓度对宁夏粳稻花药培养的影响 | 第39-41页 |
| ·不同蔗糖浓度对宁夏粳稻花药离体培养的影响 | 第41页 |
| ·不同碳源对宁夏粳稻花药培养的影响 | 第41-42页 |
| ·接种不同环境条件的花药对离体培养的影响 | 第42-43页 |
| ·低温预处理对宁夏粳稻花药愈伤组织诱导的影响 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-46页 |
| 第四章 宁夏粳稻农杆菌介导法遗传转化体系建立及优化 | 第46-56页 |
| ·材料与方法 | 第46-49页 |
| ·供试材料 | 第46-47页 |
| ·农杆菌介导法HALl转化宁夏粳稻受体体系的建立及优化 | 第47-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-53页 |
| ·Kan对宁夏粳稻成熟胚诱导愈伤组织的筛选浓度的确定 | 第49-50页 |
| ·筛选过程中Cb对愈伤组织的影响 | 第50-51页 |
| ·外植体与农杆菌最佳共培养时间的确定 | 第51页 |
| ·除菌方式的优化 | 第51-52页 |
| ·脱菌后的干燥处理对水稻愈伤组织遗传转化的影响 | 第52-53页 |
| ·转化植株的获得 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-56页 |
| 第五章 宁夏粳稻HALl基因的遗传转化与分子检测 | 第56-61页 |
| ·材料与方法 | 第56-58页 |
| ·宁夏粳稻HALl基因的遗传转化 | 第56页 |
| ·分子检测 | 第56-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-59页 |
| ·宁夏粳稻HALl农杆菌法的遗传转化 | 第58页 |
| ·分子检测 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 英文缩写词表 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简介 | 第71页 |
