| 内容提要 | 第1-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-35页 |
| ·糖尿病的分类及并发症 | 第13-17页 |
| ·糖尿病的分类 | 第13-14页 |
| ·糖尿病并发症 | 第14-17页 |
| ·糖尿病的致病机理及相关因素 | 第17-23页 |
| ·胰岛素抵抗（insulin resistance IR）与糖尿病 | 第17-19页 |
| ·胰岛素分泌缺陷与糖尿病 | 第19-20页 |
| ·一氧化氮（NO）与糖尿病 | 第20-22页 |
| ·糖尿病与氧自由基 | 第22-23页 |
| ·糖尿病的治疗 | 第23-32页 |
| ·口服降糖西药 | 第23-25页 |
| ·胰岛素 | 第25-26页 |
| ·治疗糖尿病常用的中药 | 第26-31页 |
| ·糖尿病治疗中存在的问题 | 第31-32页 |
| ·立题意义及主要研究内容 | 第32-35页 |
| 第二章 灰蔸巴有效成分提取及确定 | 第35-56页 |
| ·实验材料 | 第35-36页 |
| ·药物 | 第35页 |
| ·试剂 | 第35-36页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-41页 |
| ·药物的提取 | 第36页 |
| ·血糖值测定方法 | 第36-37页 |
| ·四氧嘧啶致糖尿病小鼠 | 第37页 |
| ·四氧嘧啶致糖尿病大鼠 | 第37-38页 |
| ·灰蔸巴有效成分的鉴别方法2.2.5.1 氨基酸、多肽、蛋白质 | 第38-41页 |
| ·统计分析 | 第41页 |
| ·实验结果 | 第41-53页 |
| ·灰蔸巴(HDB)提取收率 | 第41页 |
| ·糖尿病实验动物模型的建立 | 第41-45页 |
| ·灰蔸巴提取物降糖作用研究 | 第45-48页 |
| ·灰蔸巴组成分析 | 第48-49页 |
| ·灰蔸巴多糖(HDBW-1)对糖尿病动物模型的降血糖作用 | 第49-53页 |
| ·讨论 | 第53-56页 |
| ·灰蔸巴(HDB)提取物降糖研究 | 第53-54页 |
| ·四氧嘧啶建立糖尿病实验动物模型 | 第54-55页 |
| ·灰蔸巴(HDB)成分鉴定及活性研究 | 第55-56页 |
| 第三章 HDBW-1 提取工艺研究 | 第56-79页 |
| ·实验材料 | 第56-57页 |
| ·药物 | 第56页 |
| ·试剂 | 第56-57页 |
| ·实验动物 | 第57页 |
| ·仪器 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-62页 |
| ·HDBW-1 提取及含量测定 | 第57-59页 |
| ·利用响应面法优化HDBW-1 水提取工艺 | 第59-60页 |
| ·利用响应面法优化HDBW-1 超声波提取工艺 | 第60-61页 |
| ·HDBW-1 分级方法 | 第61页 |
| ·HDBW-1 醇沉各组分活性研究 | 第61-62页 |
| ·统计分析 | 第62页 |
| ·实验结果 | 第62-77页 |
| ·HDB 粗多糖含量测定 | 第62-63页 |
| ·HDBW-1 水提取工艺优化 | 第63-69页 |
| ·HDBW-1 超声波提取研究 | 第69-74页 |
| ·HDBW-1 醇沉工艺的确定 | 第74-75页 |
| ·HDBW-1 醇沉各组分活性研究 | 第75-77页 |
| ·讨论 | 第77-79页 |
| ·HDBW-1 水提取工艺与超声波提取工艺比较研究 | 第77页 |
| ·HDBW-1 醇沉各组分活性比较 | 第77-79页 |
| 第四章 HDBW-1C 降血糖活性研究 | 第79-100页 |
| ·实验材料 | 第80-81页 |
| ·药物 | 第80页 |
| ·试剂 | 第80页 |
| ·实验动物 | 第80-81页 |
| ·仪器 | 第81页 |
| ·实验方法 | 第81-87页 |
| ·实验动物分组 | 第81页 |
| ·糖尿病动物模型建立方法 | 第81-82页 |
| ·血糖值测定方法 | 第82页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第82-83页 |
| ·谷胱甘肽超氧化物酶（GSH-Px）活性测定 | 第83-84页 |
| ·丙二醛(MDA)含量测定 | 第84-85页 |
| ·总胆固醇（TC）含量测定 | 第85-86页 |
| ·甘油三酯(TG)含量的测定 | 第86页 |
| ·高密度脂蛋白胆固醇（HDL-C）含量测定 | 第86页 |
| ·低密度脂蛋白胆固醇（LDL-C）含量测定 | 第86页 |
| ·血尿素氮（BUN）含量测定 | 第86-87页 |
| ·统计分析 | 第87页 |
| ·实验结果 | 第87-97页 |
| ·HDBW-1C 对糖尿病实验动物模型血糖的影响 | 第87-89页 |
| ·HDBW-1C 抗氧化性研究 | 第89-95页 |
| ·HDBW-1C 降血脂活性研究 | 第95-97页 |
| ·讨论 | 第97-100页 |
| ·HDBW-1C 降血糖活性研究 | 第97页 |
| ·HDBW-1C 抗氧化活性研究 | 第97-98页 |
| ·HDBW-1C 降血脂活性研究 | 第98-100页 |
| 第五章 HDBW-1C 对糖尿病预防作用的研究 | 第100-121页 |
| ·实验材料 | 第101-102页 |
| ·药物 | 第101页 |
| ·试剂 | 第101-102页 |
| ·实验动物 | 第102页 |
| ·仪器 | 第102页 |
| ·实验方法 | 第102-105页 |
| ·药物的提取及配制 | 第102页 |
| ·血糖值测定方法 | 第102页 |
| ·HDBW-1C 对小鼠由四氧嘧啶引起的糖尿病的预防作用 | 第102-103页 |
| ·HDBW-1C 对大鼠由四氧嘧啶引起的糖尿病的预防作用 | 第103-104页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第104页 |
| ·谷胱甘肽超氧化物酶（GSH-Px）活性测定 | 第104页 |
| ·丙二醛(MDA)含量测定 | 第104-105页 |
| ·总胆固醇（TC）含量测定 | 第105页 |
| ·甘油三酯(TG)含量的测定 | 第105页 |
| ·高密度脂蛋白胆固醇（HDL-C）含量测定 | 第105页 |
| ·低密度脂蛋白胆固醇（LDL-C）含量测定 | 第105页 |
| ·血尿素氮（BUN）含量测定 | 第105页 |
| ·统计分析 | 第105页 |
| ·结果 | 第105-118页 |
| ·HDBW-1C 对小鼠由四氧嘧啶引起的糖尿病的预防作用 | 第105-106页 |
| ·HDBW-1C 对大鼠由四氧嘧啶引起的糖尿病的预防作用 | 第106-107页 |
| ·HDBW-1C 抗氧化活性研究 | 第107-115页 |
| ·HDBW-1C 降血脂活性研究 | 第115-118页 |
| ·讨论 | 第118-121页 |
| 第六章 HDBW-1C 的毒理研究 | 第121-134页 |
| ·实验材料 | 第121页 |
| ·药物 | 第121页 |
| ·仪器 | 第121页 |
| ·实验动物 | 第121页 |
| ·实验方法 | 第121-126页 |
| ·急性毒性实验 | 第121-122页 |
| ·亚急性毒性试验 | 第122-123页 |
| ·长期毒性实验 | 第123页 |
| ·特殊毒性实验 | 第123-126页 |
| ·实验结果 | 第126-133页 |
| ·急性毒性实验 | 第126-127页 |
| ·亚急性毒性实验 | 第127-129页 |
| ·长期毒性实验 | 第129-131页 |
| ·特殊毒性实验 | 第131-133页 |
| ·讨论 | 第133-134页 |
| 第七章 HDBW-1C 的初步分离纯化研究 | 第134-146页 |
| ·实验材料 | 第134-135页 |
| ·药物 | 第134页 |
| ·试剂 | 第134-135页 |
| ·仪器 | 第135页 |
| ·实验方法 | 第135-138页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱的装填 | 第136-137页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱分离组分对糖尿病动物糖耐量的影响 | 第137-138页 |
| ·高效液相色谱法测定单糖组成 | 第138页 |
| ·实验结果 | 第138-145页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱分离结果 | 第138-139页 |
| ·HDBW-1C 分子量测定 | 第139-140页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱分离组分对糖尿病动物糖耐量的影响 | 第140-142页 |
| ·HDBW-1C 组成 | 第142-145页 |
| ·讨论 | 第145-146页 |
| ·HDBW-1C 的分离纯化 | 第145页 |
| ·HDBW-1C 的组成对糖尿病动物糖耐量的影响分析 | 第145页 |
| ·HDBW-1C 的组成分析 | 第145-146页 |
| 参考文献 | 第146-155页 |
| 致谢 | 第155-156页 |
| 摘要 | 第156-158页 |
| Abstract | 第158-160页 |
