| 摘要 | 第10-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 1 引言 | 第13-28页 |
| 1.1 多糖概述 | 第13页 |
| 1.2 多糖提取方法 | 第13-15页 |
| 1.2.1 热水浸提法 | 第13页 |
| 1.2.2 酸碱提取法 | 第13-14页 |
| 1.2.3 酶辅助提取法 | 第14页 |
| 1.2.4 超声波辅助提取法 | 第14页 |
| 1.2.5 微波辅助提取法 | 第14页 |
| 1.2.6 超临界流体萃取法 | 第14-15页 |
| 1.3 多糖分离纯化技术 | 第15-19页 |
| 1.3.1 除蛋白质 | 第15-16页 |
| 1.3.2 除色素 | 第16页 |
| 1.3.3 透析法 | 第16-17页 |
| 1.3.4 沉淀法 | 第17页 |
| 1.3.5 柱层析法 | 第17-18页 |
| 1.3.6 膜分离法 | 第18页 |
| 1.3.7 多糖纯度鉴定 | 第18-19页 |
| 1.4 多糖结构分析技术 | 第19-23页 |
| 1.4.1 水解法 | 第19-20页 |
| 1.4.2 高碘酸氧化与Smith降解 | 第20页 |
| 1.4.3 甲基化法 | 第20页 |
| 1.4.4 红外光谱与紫外光谱法 | 第20-21页 |
| 1.4.5 气相色谱法 | 第21页 |
| 1.4.6 高效液相色谱法 | 第21页 |
| 1.4.7 质谱法 | 第21-22页 |
| 1.4.8 核磁共振法 | 第22页 |
| 1.4.9 原子力显微镜 | 第22页 |
| 1.4.10 动态光散射仪和静态光散射仪 | 第22-23页 |
| 1.5 多糖的生物活性 | 第23-26页 |
| 1.5.1 降血糖活性 | 第23页 |
| 1.5.2 降血脂活性 | 第23-24页 |
| 1.5.3 抗氧化活性 | 第24页 |
| 1.5.4 抗肿瘤 | 第24页 |
| 1.5.5 抗病毒活性 | 第24-25页 |
| 1.5.6 免疫调节性 | 第25页 |
| 1.5.7 抗疲劳 | 第25页 |
| 1.5.8 多糖的其他活性 | 第25-26页 |
| 1.6 南瓜籽概述 | 第26页 |
| 1.7 本文研究的意义及主要内容 | 第26-28页 |
| 1.7.1 研究的意义 | 第26-27页 |
| 1.7.2 研究的主要内容 | 第27页 |
| 1.7.3 研究特色与创新 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-42页 |
| 2.1 试验材料 | 第28-30页 |
| 2.1.1 原料 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 仪器 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-42页 |
| 2.2.1 南瓜籽粗多糖提取 | 第30页 |
| 2.2.2 多糖含量测定 | 第30页 |
| 2.2.3 蛋白质含量测定 | 第30-31页 |
| 2.2.4 复合酶法优化提取南瓜籽多糖工艺 | 第31-32页 |
| 2.2.5 PSP脱蛋白工艺优化 | 第32-33页 |
| 2.2.6 南瓜籽粗多糖的功能性质 | 第33-34页 |
| 2.2.7 南瓜籽多糖柱层析纯化 | 第34页 |
| 2.2.8 南瓜籽多糖PSP-1的理化性质 | 第34-35页 |
| 2.2.9 南瓜籽多糖PSP-1分子量的测定 | 第35页 |
| 2.2.10 南瓜籽多糖PSP-1的结构分析 | 第35-37页 |
| 2.2.11 南瓜籽多糖PSP-1的体外活性研究 | 第37-41页 |
| 2.2.12 数据处理 | 第41-42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-82页 |
| 3.1 南瓜籽多糖复合酶辅助提取优化工艺 | 第42-51页 |
| 3.1.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第42页 |
| 3.1.2 复合酶辅助提取单因素的确定 | 第42-45页 |
| 3.1.3 酶辅助提取南瓜籽粗多糖的响应面分析 | 第45-51页 |
| 3.2 南瓜籽粗多糖脱蛋白率的工艺优化 | 第51-59页 |
| 3.2.1 蛋白质标准曲线 | 第51页 |
| 3.2.2 单因素条件的确定 | 第51-54页 |
| 3.2.3 南瓜籽多糖脱蛋白率的响应面分析 | 第54-59页 |
| 3.3 南瓜籽粗多糖功能性质测定结果分析 | 第59-61页 |
| 3.3.1 溶解性分析 | 第59-60页 |
| 3.3.2 持水性和持油性分析 | 第60页 |
| 3.3.3 乳化性及乳化稳定性分析 | 第60-61页 |
| 3.3.4 阳离子交换能力分析 | 第61页 |
| 3.3.5 讨论 | 第61页 |
| 3.4 南瓜籽多糖的分离纯化 | 第61-62页 |
| 3.5 南瓜籽多糖PSP-1的理化性质分析 | 第62-63页 |
| 3.6 南瓜籽多糖PSP-1的分子量分析 | 第63-64页 |
| 3.7 南瓜籽多糖PSP-1的结构分析 | 第64-72页 |
| 3.7.1 南瓜籽多糖紫外光谱测定 | 第64页 |
| 3.7.2 南瓜籽多糖红外光谱分析 | 第64-65页 |
| 3.7.3 PSP-1单糖组成分析 | 第65-66页 |
| 3.7.4 PSP-1氨基酸组成分析 | 第66页 |
| 3.7.5 PSP-1糖肽键特征分析 | 第66-67页 |
| 3.7.6 PSP-1高碘酸氧化分析 | 第67-68页 |
| 3.7.7 PSP-1刚果红实验分析 | 第68-69页 |
| 3.7.8 核磁分析 | 第69-72页 |
| 3.7.9 PSP-1扫描电镜分析 | 第72页 |
| 3.7.10 讨论 | 第72页 |
| 3.8 南瓜籽多糖PSP-1DE的活性分析 | 第72-82页 |
| 3.8.1 PSP-1对DPPH自由基清除作用 | 第72-73页 |
| 3.8.2 PSP-1对·OH清除作用 | 第73-74页 |
| 3.8.3 PSP-1对O_2~-·清除作用 | 第74-75页 |
| 3.8.4 PSP-1抗脂质过氧化能力测定 | 第75页 |
| 3.8.5 PSP-1对亚硝酸根离子的清除作用 | 第75-76页 |
| 3.8.6 PSP-1对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第76-77页 |
| 3.8.7 PSP-1对α-淀粉酶的抑制作用 | 第77页 |
| 3.8.8 PSP-1对α-淀粉酶活力抑制动力学分析 | 第77-79页 |
| 3.8.9 体外模拟消化分析 | 第79-81页 |
| 3.8.10 讨论 | 第81-82页 |
| 4 结论 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第92页 |