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鲤疱疹病毒Ⅱ型ORF25编码蛋白的免疫原性及其与细胞相互作用受体蛋白的筛选

摘要第9-12页
ABSTRACT第12-15页
缩略表 (按字母顺序排列)第16-19页
第一章 文献综述第19-31页
    1.1 鲤疱疹病毒Ⅱ型研究进展第19-28页
        1.1.1 流行病学第19-22页
        1.1.2 病原学第22-24页
        1.1.3 诊断与检测方法第24-27页
        1.1.4 防治措施第27-28页
    1.2 病毒感染宿主细胞的分子机制第28-29页
    1.3 酵母双杂交技术及其在水生动物病毒研究中的应用第29-31页
第二章 不同地区来源CyHV-2分离株部分基因序列比较分析第31-52页
    2.1 研究目的与意义第31页
    2.2 实验材料第31-33页
        2.2.1 病料样品第31-32页
        2.2.2 菌株与质粒第32页
        2.2.3 主要试剂第32页
        2.2.4 主要耗材第32页
        2.2.5 主要实验仪器设备第32-33页
    2.3 实验方法第33-39页
        2.3.1 PCR引物设计第33页
        2.3.2 病毒DNA的提取第33-34页
        2.3.3 CyHV-2PCR检测第34-35页
        2.3.4 CyHV-2部分基因片段扩增第35-36页
        2.3.5 目的片段连接T载体及测序第36-39页
    2.4 结果与分析第39-49页
        2.4.1 13株不同地区来源的CyHV-2鉴定第39-40页
        2.4.2 CyHV-2 ORF25基因序列分析第40-41页
        2.4.3 CyHV-2 ORF72基因序列分析第41-42页
        2.4.4 CyHV-2 ORF55部分基因序列分析第42-43页
        2.4.5 CyHV-2 ORF25B部分基因序列分析第43-47页
        2.4.6 CyHV-2 ORF25D部分基因序列分析第47-49页
    2.5 讨论第49-52页
第三章 鲤疱疹病毒Ⅱ型ORF25截短蛋白的原核表达及免疫原性分析第52-70页
    3.1 研究目的与意义第52页
    3.2 实验材料第52-53页
        3.2.1 实验鱼及饲养条件第52页
        3.2.2 病毒与细胞系第52页
        3.2.3 菌株与质粒第52页
        3.2.4 主要试剂第52-53页
        3.2.5 主要耗材第53页
        3.2.6 主要实验仪器设备第53页
    3.3 实验方法第53-61页
        3.3.1 CyHV-2在GiCB细胞中的增殖第53-54页
        3.3.2 CyHV-2病毒DNA的提取第54页
        3.3.3 CyHV-2 ORF25截短表达基因序列的选择第54页
        3.3.4 PCR引物设计第54页
        3.3.5 PCR扩增目的基因第54-55页
        3.3.6 PCR产物的电泳检测及纯化第55页
        3.3.7 目的片段连接T载体及测序第55-56页
        3.3.8 原核表达载体的构建第56-57页
        3.3.9 重组蛋白的诱导表达第57-58页
        3.3.10 重组蛋白的处理第58页
        3.3.11 重组蛋白的纯化第58-59页
        3.3.12 多克隆抗体制备及效价测定第59页
        3.3.13 Westernblot分析第59-60页
        3.3.14 间接免疫荧光检测第60页
        3.3.15 重组蛋白免疫保护率测定第60-61页
        3.3.16 数据分析第61页
    3.4 结果第61-67页
        3.4.1 CyHV-2 ORF25截短表达基因序列的选择第61-62页
        3.4.2 CyHV-2 ORF25基因克隆第62-63页
        3.4.3 CyHV-2 ORF25基因T载体构建第63-64页
        3.4.4 重组表达载体的构建及鉴定第64-65页
        3.4.5 重组蛋白的表达与纯化第65-66页
        3.4.6 重组蛋白多克隆抗体的制备及检测第66页
        3.4.7 间接免疫荧光检测第66-67页
        3.4.8 重组蛋白免疫保护率测定第67页
    3.5 讨论第67-70页
第四章 鲤疱疹病毒Ⅱ型ORF25在毕赤酵母中的表达及其免疫原性研究第70-93页
    4.1 研究目的与意义第70页
    4.2 实验材料第70-72页
        4.2.1 实验鱼及饲养条件第70页
        4.2.2 病毒与细胞系第70-71页
        4.2.3 菌株与质粒第71页
        4.2.4 主要试剂第71页
        4.2.5 主要耗材第71页
        4.2.6 主要实验仪器设备第71-72页
    4.3 实验方法第72-85页
        4.3.1 CyHV-2 ORF25基因的扩增与纯化第72-73页
        4.3.2 CyHV-2 ORF25基因连接T载体及测序第73-74页
        4.3.3 毕赤酵母表达载体的构建第74-76页
        4.3.4 重组质粒的线性化和回收第76页
        4.3.5 电转酵母菌第76-77页
        4.3.6 转化子的筛选及鉴定第77-78页
        4.3.7 重组酵母的甲醇诱导表达第78-79页
        4.3.8 表达产物的观察与分析第79-81页
        4.3.9 纯化产物的特性研究第81页
        4.3.10 免疫原的制备第81页
        4.3.11 注射免疫第81-82页
        4.3.12 样品采集与处理第82页
        4.3.13 中和抗体效价检测第82页
        4.3.14 免疫相关基因表达变化第82-84页
        4.3.15 攻毒实验第84页
        4.3.16 数据分析第84-85页
    4.4 结果与分析第85-91页
        4.4.1 CyHV-2 ORF25基因克隆与重组质粒构建第85-86页
        4.4.2 表达产物纯化第86页
        4.4.3 SDS-PAGE和Western blotting检测表达产物第86-87页
        4.4.4 免疫电镜观察结果第87-88页
        4.4.5 病毒滴度抑制实验第88页
        4.4.6 血清中和抗体效价第88-89页
        4.4.7 免疫相关基因的表达变化第89-90页
        4.4.8 相对免疫保护率第90-91页
    4.5 讨论第91-93页
第五章 鲤疱疹病毒Ⅱ型ORF25编码蛋白宿主细胞受体的初步筛选第93-115页
    5.1 研究目的与意义第93页
    5.2 实验材料第93-94页
        5.2.1 病毒与细胞系第93页
        5.2.2 菌株与质粒第93-94页
        5.2.3 主要试剂第94页
        5.2.4 主要耗材第94页
        5.2.5 主要实验仪器设备第94页
    5.3 实验方法第94-104页
        5.3.1 GiCB细胞酵母双杂交cDNA文库的构建第94-100页
        5.3.2 CyHV-2 ORF25编码蛋白酵母双杂交诱饵载体的构建及鉴定第100-103页
        5.3.3 筛选与CyHV-2 ORF25编码蛋白互作的GiCB细胞受体第103-104页
    5.4 结果与分析第104-113页
        5.4.1 GiCB细胞总RNA的提取第104-105页
        5.4.2 文库质量鉴定第105-106页
        5.4.3 CyHV-2-ORF25片段的扩增结果第106-107页
        5.4.4 重组诱饵质粒双酶切及PCR鉴定第107-108页
        5.4.5 酵母菌株阳性克隆的鉴定第108-109页
        5.4.6 重组菌报告基因表达检测结果第109-110页
        5.4.7 筛选与CyHV-2 ORF25编码蛋白互作的细胞受体第110-112页
        5.4.8 初步验证与CyHV-2 ORF25编码蛋白互作的细胞受体第112-113页
    5.5 讨论第113-115页
第六章 结论第115-116页
参考文献第116-124页
附录第124-127页
致谢第127-128页

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