| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第12-34页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 简介光动力治疗 | 第13-18页 |
| 1.2.1 发展历史 | 第13-15页 |
| 1.2.2 原理 | 第15-17页 |
| 1.2.3 优缺点 | 第17-18页 |
| 1.3 光敏剂 | 第18-27页 |
| 1.3.1 理想光敏剂 | 第18-19页 |
| 1.3.2 光敏剂的分类 | 第19-27页 |
| 1.3.3 当前光敏剂所面临的挑战 | 第27页 |
| 1.4 新型复合纳米材料 | 第27-31页 |
| 1.4.1 纳米给药系统概述 | 第27-29页 |
| 1.4.2 纳米给药系统分类 | 第29-31页 |
| 1.5 本论文的选题依据与研究内容 | 第31-34页 |
| 1.5.1 研究目的意义 | 第31-32页 |
| 1.5.2 本课题开展的实验内容 | 第32-34页 |
| 第2章 二氢卟吩光敏剂酰胺p6（ACP6）的制备及光动力活性研究 | 第34-48页 |
| 2.1 前言 | 第34-35页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第35-36页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第35页 |
| 2.2.2 实验仪器及测试条件 | 第35-36页 |
| 2.3 实验部分 | 第36-40页 |
| 2.3.1 二氢卟吩酰胺p6（ACP6）的制备 | 第36页 |
| 2.3.2 单线态氧产率检测 | 第36-37页 |
| 2.3.3 ACP6光稳定性检测 | 第37页 |
| 2.3.4 细胞培养 | 第37-38页 |
| 2.3.5 MTT法检测细胞毒性 | 第38页 |
| 2.3.6 细胞吞噬 | 第38页 |
| 2.3.7 光反应机制的研究 | 第38-39页 |
| 2.3.8 ACP6-PDT处理后细胞形态变化 | 第39页 |
| 2.3.9 RNA提取和实时荧光定量PCR实验 | 第39页 |
| 2.3.10 数据统计分析 | 第39-40页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第40-46页 |
| 2.4.1 ACP6的单线态氧产率 | 第40-41页 |
| 2.4.2 ACP6光稳定性检测 | 第41页 |
| 2.4.3 ACP6光动力活性 | 第41-42页 |
| 2.4.4 ACP6的光动力机制研究 | 第42-43页 |
| 2.4.5 细胞吞噬 | 第43-44页 |
| 2.4.6 细胞形态变化 | 第44-45页 |
| 2.4.7 Survivin and CDK-2 基因的qRT-PCR表达分析 | 第45-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-48页 |
| 第3章 分散性石墨烯负载叶绿素衍生物的制备及光动力活性研究 | 第48-68页 |
| 3.1 前言 | 第48-50页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第50-51页 |
| 3.2.2 实验仪器及测试条件 | 第51页 |
| 3.3 实验部分 | 第51-54页 |
| 3.3.1 复合光敏剂G-BPMppa的合成与表征 | 第51-52页 |
| 3.3.2 单线态氧产率检测 | 第52页 |
| 3.3.3 细胞培养和MTT检测毒性 | 第52-53页 |
| 3.3.4 细胞吞噬 | 第53页 |
| 3.3.5 光反应机制的研究 | 第53-54页 |
| 3.3.6 细胞形态学变化 | 第54页 |
| 3.3.7 数据统计分析 | 第54页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第54-66页 |
| 3.4.1 复合光敏剂G-BPMppa的表征 | 第54-61页 |
| 3.4.2 G-BPMppa的单线态氧产率 | 第61-62页 |
| 3.4.3 细胞吞噬 | 第62-63页 |
| 3.4.4 G-BPMppa的光动力活性 | 第63-64页 |
| 3.4.5 G-BPMppa的光动力机制研究 | 第64-65页 |
| 3.4.6 细胞形态变化 | 第65-66页 |
| 3.5 本章小结 | 第66-68页 |
| 第4章 线粒体靶向载药系统负载焦脱镁叶绿酸-a的制备及光动力活性研究 | 第68-90页 |
| 4.1 前言 | 第68-70页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第70-72页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第70-71页 |
| 4.2.2 实验仪器及测试条件 | 第71-72页 |
| 4.3 实验部分 | 第72-76页 |
| 4.3.1 GO-Fe_3O_4的合成 | 第72页 |
| 4.3.2 FA-PEI的合成 | 第72页 |
| 4.3.3 TPP-PPa的合成 | 第72-73页 |
| 4.3.4 GO-Fe_3O_4-FA-PEI的合成 | 第73页 |
| 4.3.5 不同纳米粒子负载光敏剂的合成 | 第73页 |
| 4.3.6 GFFP-TPa NPs的单线态氧产率 | 第73-74页 |
| 4.3.7 体外释放实验 | 第74页 |
| 4.3.8 GFFP-TPa的稳定性及光漂白性 | 第74页 |
| 4.3.9 细胞培养和细胞毒性实验 | 第74-75页 |
| 4.3.10 PDT后GFFP-TPa的作用机理 | 第75页 |
| 4.3.11 体外细胞吞噬 | 第75页 |
| 4.3.12 叶酸靶向性实验 | 第75页 |
| 4.3.13 体外ROS测定 | 第75-76页 |
| 4.3.14 亚细胞器定位 | 第76页 |
| 4.3.15 数据统计分析 | 第76页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第76-88页 |
| 4.4.1 纳米粒子的制备与表征 | 第76-80页 |
| 4.4.2 GFFP-TPa的药物释放和单线态氧产率 | 第80-82页 |
| 4.4.3 GFFP-TPa的稳定性及光稳定性 | 第82页 |
| 4.4.4 体外PDT治疗 | 第82-84页 |
| 4.4.5 PDT中GFEP-TPa的I型和I型机理 | 第84页 |
| 4.4.6 细胞吞噬 | 第84-85页 |
| 4.4.7 叶酸靶向性证明实验 | 第85-86页 |
| 4.4.8 PDT中GFFP-TPa体外ROS的测定 | 第86-87页 |
| 4.4.9 亚细胞定位 | 第87-88页 |
| 4.4.10 细胞形态学变化 | 第88页 |
| 4.5 本章小结 | 第88-90页 |
| 结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-102页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第102-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
