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快绿对抗神经炎症的作用研究及可能机制的探索

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
引言第10-13页
1 实验材料第13-18页
    1.1 实验动物第13页
    1.2 实验试剂第13-15页
        1.2.1 常规试剂及药品第13页
        1.2.2 细胞实验相关试剂第13-14页
        1.2.3 ELISA试剂盒第14页
        1.2.4 qRT-PCR相关试剂第14页
        1.2.5 Western blot相关试剂第14-15页
    1.3 主要仪器设备第15-16页
    1.4 常用溶液配制第16-18页
2 实验方法第18-22页
    2.1 细胞实验第18页
        2.1.1 细胞培养第18页
        2.1.2 细胞增殖率测定(MTT法)第18页
    2.2 行为学检测第18-20页
        2.2.1 热痛阈测定第18页
        2.2.2 机械痛阈测定第18页
        2.2.3 糖水偏好(sucrose preference test,SPT)第18-19页
        2.2.4 强迫游泳实验(forced swimming test,FST)第19页
        2.2.5 新物体识别实验(novel object recognition test,NORT)第19页
        2.2.6 摄食抑制实验(novelty-suppressed feeding test,NSFT)第19-20页
    2.3 分子生物学实验第20-21页
        2.3.1 酶联免疫吸附试验(enzyme linked immunosorbent assay, ELISA)第20页
        2.3.2 实时定量聚合酶链反应(quantitative real-time polymerase chainreaction,q RT-PCR)第20页
        2.3.3 蛋白免疫印迹法(western blot,WB)第20-21页
    2.4 分子对接第21页
    2.5 数据分析第21-22页
3 实验设计第22-26页
    3.1 实验一:快绿对H2O2引发的细胞氧化应激的作用第22页
    3.2 实验二:快绿对CFA诱导的外周神经炎症的作用及可能机制第22-23页
        3.2.1 动物与分组第22页
        3.2.2 药物处理第22-23页
        3.2.3 痛觉行为学检测第23页
        3.2.4 生化指标检测第23页
    3.3 实验三:快绿对抗CFA引发的外周神经炎症的作用与P2X7受体的关系第23-24页
    3.4 实验四:快绿对LPS诱导的中枢神经炎症的作用及可能机制第24-26页
        3.4.1 动物及分组第24-25页
        3.4.2 药物处理第25页
        3.4.3 认知和抑郁行为学检测第25页
        3.4.4 细胞因子的检测第25-26页
4 实验结果第26-44页
    4.1 实验一:在细胞实验中快绿能够有效抑制H2O2对细胞的氧化应激作用第26-27页
    4.2 实验二:快绿对CFA诱导的外周神经炎症的作用及机制第27-38页
        4.2.1 快绿改善CFA诱导的热痛和机械痛痛觉过敏的现象第27-31页
        4.2.2 快绿抑制CFA小鼠脊髓和炎症脚掌组织中炎症因子的水平,但不改变脊髓中神经营养因子水平第31-34页
        4.2.3 快绿抑制CFA小鼠脊髓中P2X4的mRNA表达,但不影响CFA小鼠脊髓中P2X7和TLR的mRNA表达第34-36页
        4.2.4 快绿抑制CFA小鼠脊髓中P2X4的蛋白表达第36-37页
        4.2.5 分子对接模拟表明快绿与P2X4离子通道可能存在交互作用第37-38页
    4.3 实验三:快绿抗CFA诱发的外周神经炎症的作用并未有P2X7参与,尽管快绿与P2X7受体拮抗剂BBG有相似的分子结构第38-40页
    4.4 实验四:快绿对LPS诱导的中枢神经炎症的作用及可能机制第40-44页
        4.4.1 快绿改善LPS诱导的认知障碍和抑郁样行为第40-42页
        4.4.2 快绿抑制LPS小鼠海马中炎症因子的水平第42-44页
5 讨论第44-47页
6 结论第47-48页
参考文献第48-54页
附录A 主要缩略词中英文对照表第54-55页
在学研究成果第55-56页
致谢第56-57页

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