摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
引言 | 第10-13页 |
1 实验材料 | 第13-18页 |
1.1 实验动物 | 第13页 |
1.2 实验试剂 | 第13-15页 |
1.2.1 常规试剂及药品 | 第13页 |
1.2.2 细胞实验相关试剂 | 第13-14页 |
1.2.3 ELISA试剂盒 | 第14页 |
1.2.4 qRT-PCR相关试剂 | 第14页 |
1.2.5 Western blot相关试剂 | 第14-15页 |
1.3 主要仪器设备 | 第15-16页 |
1.4 常用溶液配制 | 第16-18页 |
2 实验方法 | 第18-22页 |
2.1 细胞实验 | 第18页 |
2.1.1 细胞培养 | 第18页 |
2.1.2 细胞增殖率测定(MTT法) | 第18页 |
2.2 行为学检测 | 第18-20页 |
2.2.1 热痛阈测定 | 第18页 |
2.2.2 机械痛阈测定 | 第18页 |
2.2.3 糖水偏好(sucrose preference test,SPT) | 第18-19页 |
2.2.4 强迫游泳实验(forced swimming test,FST) | 第19页 |
2.2.5 新物体识别实验(novel object recognition test,NORT) | 第19页 |
2.2.6 摄食抑制实验(novelty-suppressed feeding test,NSFT) | 第19-20页 |
2.3 分子生物学实验 | 第20-21页 |
2.3.1 酶联免疫吸附试验(enzyme linked immunosorbent assay, ELISA) | 第20页 |
2.3.2 实时定量聚合酶链反应(quantitative real-time polymerase chainreaction,q RT-PCR) | 第20页 |
2.3.3 蛋白免疫印迹法(western blot,WB) | 第20-21页 |
2.4 分子对接 | 第21页 |
2.5 数据分析 | 第21-22页 |
3 实验设计 | 第22-26页 |
3.1 实验一:快绿对H2O2引发的细胞氧化应激的作用 | 第22页 |
3.2 实验二:快绿对CFA诱导的外周神经炎症的作用及可能机制 | 第22-23页 |
3.2.1 动物与分组 | 第22页 |
3.2.2 药物处理 | 第22-23页 |
3.2.3 痛觉行为学检测 | 第23页 |
3.2.4 生化指标检测 | 第23页 |
3.3 实验三:快绿对抗CFA引发的外周神经炎症的作用与P2X7受体的关系 | 第23-24页 |
3.4 实验四:快绿对LPS诱导的中枢神经炎症的作用及可能机制 | 第24-26页 |
3.4.1 动物及分组 | 第24-25页 |
3.4.2 药物处理 | 第25页 |
3.4.3 认知和抑郁行为学检测 | 第25页 |
3.4.4 细胞因子的检测 | 第25-26页 |
4 实验结果 | 第26-44页 |
4.1 实验一:在细胞实验中快绿能够有效抑制H2O2对细胞的氧化应激作用 | 第26-27页 |
4.2 实验二:快绿对CFA诱导的外周神经炎症的作用及机制 | 第27-38页 |
4.2.1 快绿改善CFA诱导的热痛和机械痛痛觉过敏的现象 | 第27-31页 |
4.2.2 快绿抑制CFA小鼠脊髓和炎症脚掌组织中炎症因子的水平,但不改变脊髓中神经营养因子水平 | 第31-34页 |
4.2.3 快绿抑制CFA小鼠脊髓中P2X4的mRNA表达,但不影响CFA小鼠脊髓中P2X7和TLR的mRNA表达 | 第34-36页 |
4.2.4 快绿抑制CFA小鼠脊髓中P2X4的蛋白表达 | 第36-37页 |
4.2.5 分子对接模拟表明快绿与P2X4离子通道可能存在交互作用 | 第37-38页 |
4.3 实验三:快绿抗CFA诱发的外周神经炎症的作用并未有P2X7参与,尽管快绿与P2X7受体拮抗剂BBG有相似的分子结构 | 第38-40页 |
4.4 实验四:快绿对LPS诱导的中枢神经炎症的作用及可能机制 | 第40-44页 |
4.4.1 快绿改善LPS诱导的认知障碍和抑郁样行为 | 第40-42页 |
4.4.2 快绿抑制LPS小鼠海马中炎症因子的水平 | 第42-44页 |
5 讨论 | 第44-47页 |
6 结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
附录A 主要缩略词中英文对照表 | 第54-55页 |
在学研究成果 | 第55-56页 |
致谢 | 第56-57页 |