| 摘要 | 第10-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-29页 |
| 1.1 放线菌在微生物系统学中的地位及研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 稀有放线菌的研究进展及意义 | 第15-16页 |
| 1.3 海洋环境中稀有放线菌资源的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 海洋环境中稀有放线菌的多样性研究 | 第16-17页 |
| 1.3.2 海洋环境中稀有放线菌的生物活性研究 | 第17-18页 |
| 1.4 海洋环境中稀有放线菌选择性分离研究 | 第18-25页 |
| 1.4.1 样品来源的选择 | 第19-20页 |
| 1.4.2 样品预处理方法的选择 | 第20-22页 |
| 1.4.3 分离培养基的选择 | 第22-24页 |
| 1.4.4 抑制剂的选择 | 第24-25页 |
| 1.5 放线菌系统学研究方法及进展 | 第25-28页 |
| 1.5.1 经典分类学 | 第25页 |
| 1.5.2 化学分类学 | 第25-27页 |
| 1.5.3 分子分类学 | 第27-28页 |
| 1.5.4 多相分类学 | 第28页 |
| 1.6 本课题研究的目的、意义及内容 | 第28-29页 |
| 2 材料与方法 | 第29-66页 |
| 2.1 材料 | 第29-42页 |
| 2.1.1 样品来源 | 第29-30页 |
| 2.1.2 实验菌种来源 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验常用培养基 | 第31-36页 |
| 2.1.4 常用试剂 | 第36-41页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第41-42页 |
| 2.2 方法 | 第42-66页 |
| 2.2.1 稀有放线菌的选择分离、纯化及保藏 | 第42-45页 |
| 2.2.2 菌株排重 | 第45页 |
| 2.2.3 放线菌16S rRNA分子鉴定 | 第45-49页 |
| 2.2.4 多相分类研究 | 第49-63页 |
| 2.2.5 生物活性测定 | 第63-66页 |
| 3 结果与分析 | 第66-90页 |
| 3.1 海洋放线菌的分离与鉴定 | 第66-73页 |
| 3.1.1 不同培养基选择分离效果 | 第66-69页 |
| 3.1.2 不同预处理方式选择分离效果 | 第69-70页 |
| 3.1.3 不同海洋环境样品放线菌的多样性 | 第70-73页 |
| 3.2 菌株XMU 110新种多相分类鉴定 | 第73-83页 |
| 3.2.1 野野村氏菌属描述 | 第73页 |
| 3.2.2 16S rRNA基因序列分析 | 第73-75页 |
| 3.2.3 DNA同源性分析 | 第75页 |
| 3.2.4 菌落形态特征 | 第75-77页 |
| 3.2.5 显微形态特征 | 第77-78页 |
| 3.2.6 生理生化特征 | 第78-80页 |
| 3.2.7 细胞化学组分分析 | 第80-81页 |
| 3.2.8 DNA (G+C) mol%测定 | 第81-82页 |
| 3.2.9 菌株XMU 110描述 | 第82-83页 |
| 3.3 海洋放线菌的生物活性 | 第83-90页 |
| 3.3.1 抗菌活性 | 第83-87页 |
| 3.3.2 抗肿瘤活性 | 第87-90页 |
| 4 讨论与结论 | 第90-99页 |
| 4.1 讨论 | 第90-97页 |
| 4.1.1 不同培养基对稀有放线菌选择分离效果比较 | 第90-91页 |
| 4.1.2 不同预处理方法对稀有放线菌分离效果比较 | 第91-92页 |
| 4.1.3 不同来源海洋环境中的放线菌多样性 | 第92-93页 |
| 4.1.4 海洋环境中的拟诺卡氏菌属(Nocardiopsis) | 第93页 |
| 4.1.5 放线菌的多相分类技术 | 第93-94页 |
| 4.1.6 菌株XMU 110的多相分类鉴定 | 第94-95页 |
| 4.1.7 放线菌的生物活性测定 | 第95-96页 |
| 4.1.8 不同发酵方式对粗提物活性影响 | 第96-97页 |
| 4.2 结论与展望 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-107页 |
| 附录 | 第107-142页 |
| 攻读硕士学位期间学术论文成果 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143页 |
