摘要 | 第11-12页 |
Abstract | 第12页 |
第一章 绪论 | 第13-38页 |
第一节 溶酶体成像探针相关概述 | 第13-19页 |
1.1.1 溶酶体特征与相关生物学过程 | 第13页 |
1.1.2 溶酶体现有分析方法简介 | 第13-19页 |
第二节 线粒体成像探针相关概述 | 第19-23页 |
1.2.1 线粒体特征与相关生物学过程 | 第19-20页 |
1.2.2 线粒体现有分析方法简介 | 第20-23页 |
第三节 细胞膜唾液酸糖基化概述 | 第23-30页 |
1.3.1 唾液酸的生物分布及结构与连接多样性 | 第24-27页 |
1.3.2 唾液酸的生物学作用 | 第27-30页 |
第四节 论文选题的意义及主要工作 | 第30-31页 |
参考文献 | 第31-38页 |
第二章 溶酶体pH响应的比率荧光探针及生物成像 | 第38-56页 |
2.1 引言 | 第38页 |
2.2 实验部分 | 第38-42页 |
2.2.1 仪器与材料 | 第38-39页 |
2.2.2 CM-ROX的合成 | 第39-40页 |
2.2.3 CM-ROX的pH滴定分析 | 第40-41页 |
2.2.4 CM-ROX的溶酶体成像 | 第41页 |
2.2.5 检测自噬和细胞凋亡中溶酶体酸度的变化 | 第41页 |
2.2.6 在HSV-1和VSV感染的细胞中溶酶体pH变化的成像 | 第41-42页 |
2.2.7 CM-ROX的细胞毒性 | 第42页 |
2.2.8 CM-ROX的光稳定性 | 第42页 |
2.3 结果与讨论 | 第42-53页 |
2.3.1 pH变化介导的CM-ROX的比率变化 | 第42-43页 |
2.3.2 CM-ROX在溶酶体中特异性比例荧光 | 第43-47页 |
2.3.3 不同细胞系的溶酶体pH成像 | 第47-49页 |
2.3.4 自噬期间溶酶体pH的变化 | 第49-50页 |
2.3.5 细胞凋亡期间细胞溶酶体pH的变化 | 第50-51页 |
2.3.6 病毒感染期间溶酶体pH变化的成像 | 第51-53页 |
2.4 小结 | 第53页 |
参考文献 | 第53-56页 |
第三章 线粒体膜电势响应的比率荧光探针及生物成像 | 第56-75页 |
3.1 引言 | 第56-57页 |
3.2 实验部分 | 第57-61页 |
3.2.1 仪器与材料 | 第57页 |
3.2.2 RC-TPP的合成 | 第57-59页 |
3.2.3 RC-TPP的pH滴定分析 | 第59页 |
3.2.4 细胞培养和过表达 | 第59-60页 |
3.2.5 溶酶体和线粒体在活细胞中的染色 | 第60页 |
3.2.6 溶酶体的酸性介导的逆转染色 | 第60页 |
3.2.7 CCCP介导的RC-TPP重定位的成像 | 第60页 |
3.2.8 RC-TPP介导的溶酶体荧光成像 | 第60页 |
3.2.9 流式细胞仪分析CCCP诱导的罗丹明荧光的激活 | 第60-61页 |
3.2.10 细胞死亡相关的RC-TPP荧光激活 | 第61页 |
3.2.11 RC-TPP的细胞毒性 | 第61页 |
3.3 结果与讨论 | 第61-71页 |
3.3.1 酸性pH介导RC-TPP的荧光 | 第62-63页 |
3.3.2 RC-TPP在极化线粒体中的积累 | 第63-65页 |
3.3.3 线粒体△Ψm介导的RC-TPP的溶酶体分布 | 第65-67页 |
3.3.4 使用RC-TPP进行自噬相关的线粒体去极化的荧光成像 | 第67-69页 |
3.3.5 在细胞凋亡和坏死期间分析线粒体去极化 | 第69-71页 |
3.4 小结 | 第71页 |
参考文献 | 第71-75页 |
第四章 基于细胞免疫调控研究的非天然唾液酸的合成 | 第75-88页 |
4.1 引言 | 第75页 |
4.2 实验部分 | 第75-82页 |
4.2.1 仪器与材料 | 第75-76页 |
4.2.2 非天然唾液酸的合成 | 第76-77页 |
4.2.3 乙酰基保护非天然唾液酸的合成 | 第77-80页 |
4.2.4 乙酰基保护非天然唾液酸的合成优化 | 第80-81页 |
4.2.5 非天然唾液酸的细胞实验 | 第81-82页 |
4.3 结果与讨论 | 第82-85页 |
4.3.1 非天然唾液酸的合成过程讨论 | 第82-83页 |
4.3.2 乙酰基保护非天然唾液酸的合成问题 | 第83-84页 |
4.3.3 乙酰基保护非天然唾液酸的合成优化讨论 | 第84-85页 |
4.4 小结 | 第85-86页 |
参考文献 | 第86-88页 |
硕士期间发表的论文 | 第88-89页 |
致谢 | 第89页 |