| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号表 | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第9-27页 |
| 1.1 红曲 | 第9-20页 |
| 1.1.1 红曲霉 | 第9-10页 |
| 1.1.2 红曲霉主要代谢产物及活性 | 第10-12页 |
| 1.1.3 红曲霉Azaphilone类代谢产物 | 第12-20页 |
| 1.3 光动力抗癌 | 第20-26页 |
| 1.3.1 癌症治疗手段 | 第20-24页 |
| 1.3.2 光动力治疗 | 第24-26页 |
| 1.4 本论文的研究内容及意义 | 第26-27页 |
| 1.4.1 本课题的主要研究内容 | 第26页 |
| 1.4.2 本课题的主要创新点 | 第26-27页 |
| 第二章 红曲Azaphilone化合物O1光谱性质及其光化学反应 | 第27-42页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第28-30页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第28页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-40页 |
| 2.3.1 红曲Azaphilone化合物O1光谱性质 | 第30-33页 |
| 2.3.2 红曲Azaphilone化合物O光化学反应 | 第33-40页 |
| 2.4 结论 | 第40-42页 |
| 第三章 光照条件下O1诱导Hela细胞凋亡及其机理研究 | 第42-64页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第42-45页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.2 主要材料 | 第43-44页 |
| 3.2.3 常用溶剂配制 | 第44-45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第45页 |
| 3.3.2 细胞对药物最佳摄取时间的测定 | 第45页 |
| 3.3.3 MTT法检测O1在光照和非光照条件下对Hela细胞的增殖抑制作用 | 第45-46页 |
| 3.3.4 AO/EB染色 | 第46页 |
| 3.3.5 PI染色检测细胞周期分布 | 第46-47页 |
| 3.3.6 Annexin V/PI双染法检测细胞凋亡 | 第47页 |
| 3.3.7 线粒体膜电位的检测 | 第47页 |
| 3.3.8 Caspase 3/8/9酶活性检测 | 第47-49页 |
| 3.3.9 细胞活性氧(ROS)的检测 | 第49页 |
| 3.3.10 统计学分析 | 第49页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第49-62页 |
| 3.4.1 最佳药物摄取时间 | 第49-50页 |
| 3.4.2 光照条件与非光照条件下O1对Hela细胞增殖抑制作用的对比 | 第50-53页 |
| 3.4.3 光照和非光照条件下AO/EB染色观察 | 第53-54页 |
| 3.4.4 光照和非光照条件下PI单染法检测O1对HeLa细胞周期的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.5 光照和非光照条件下Annexin/V PI双染法检测O1对Hela细胞周期的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.6 线粒体膜电位检测结果 | 第57-58页 |
| 3.4.7 Caspase 3、8、9活力检测结果 | 第58-61页 |
| 3.4.8 细胞活性氧的检测 | 第61-62页 |
| 3.5 小结 | 第62-64页 |
| 3.5.1 Azaphilone化合物O1具有诱导子宫颈癌Hela细胞凋亡作用 | 第62页 |
| 3.5.2 Azaphilone化合物O1抗癌作用机制初探 | 第62-63页 |
| 3.5.3 光照条件进一步加剧了Azaphilone化合物O1抗癌作用 | 第63-64页 |
| 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
