摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-18页 |
英文缩略语 | 第19-24页 |
第一部分 :HIV原发感染者病毒分离株生物学特性与疾病进展关系研究 | 第24-55页 |
1 前言 | 第24-25页 |
2 材料与方法 | 第25-30页 |
2.1 研究对象 | 第25-26页 |
2.1.1 原发感染者判定标准 | 第25页 |
2.1.2 感染时间估计 | 第25-26页 |
2.1.3 入选标准 | 第26页 |
2.1.4 观察终点 | 第26页 |
2.1.5 样本收集 | 第26页 |
2.2 实验材料 | 第26-27页 |
2.2.1 实验试剂 | 第26-27页 |
2.2.2 实验仪器 | 第27页 |
2.3 实验方法 | 第27-30页 |
2.3.1 CD4~+T淋巴细胞测定 | 第27-28页 |
2.3.2 病毒载量测定 | 第28页 |
2.3.3 PBMC提取 | 第28页 |
2.3.4 病毒分离 | 第28页 |
2.3.5 ELISA方法检测p24抗原 | 第28页 |
2.3.6 病毒复制动力测定 | 第28页 |
2.3.7 病毒嗜性表型测定 | 第28-29页 |
2.3.8 RNA提取 | 第29页 |
2.3.9 逆转录RT-PCR扩增 | 第29-30页 |
2.3.10 病毒嗜性基因型预测 | 第30页 |
2.3.11 统计学处理 | 第30页 |
3 实验结果 | 第30-52页 |
3.1 研究对象基本特征 | 第30-31页 |
3.2 CRF01_AE亚型原发感染者CD4细胞计数迅速下降 | 第31-32页 |
3.3 病毒分离 | 第32页 |
3.4 原发感染者病毒嗜性与疾病进展的相关性 | 第32-50页 |
3.4.1 原发感染者病毒嗜性基因型 | 第32-37页 |
3.4.2 原发感染者病毒嗜性表型 | 第37页 |
3.4.3 病毒嗜性转换 | 第37-47页 |
3.4.4 病毒嗜性转换与疾病进展的相关性 | 第47-50页 |
3.5 原发感染者病毒复制能力与疾病进展的相关性 | 第50-52页 |
3.5.1 原发感染者病毒复制能力 | 第50-51页 |
3.5.2 病毒复制能力与疾病进展的相关性 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
5 结论 | 第54-55页 |
第二部分 :HIV原发感染者病毒特异性CD8~+T细胞功能与疾病进展相关性研究 | 第55-72页 |
1 前言 | 第55-57页 |
2 对象与方法 | 第57-61页 |
2.1 研究对象 | 第57页 |
2.2 实验材料 | 第57-58页 |
2.2.1 实验试剂 | 第57-58页 |
2.2.2 实验仪器 | 第58页 |
2.3 实验方法 | 第58-60页 |
2.3.1 PBMC提取 | 第58页 |
2.3.2 HIV病毒分离 | 第58页 |
2.3.3 特异性CD8~+T细胞抑制自体病毒实验 | 第58-60页 |
2.3.4 CD8~+T细胞表面PD-1、HLA-DR、CD107a和细胞内Ki-67、IFNγ和TNFα检测 | 第60页 |
2.4 统计分析 | 第60-61页 |
3 实验结果 | 第61-67页 |
3.1 原发感染者CD4~+T细胞和CD8~+T细胞分选纯度 | 第61页 |
3.2 HIV原发感染者CD8~+T细胞抑制自体病毒能力与CD4绝对计数和病毒载量的相关性 | 第61-62页 |
3.3 CD8~+T细胞抑制自体病毒能力低的HIV原发感染者CD4~+T细胞绝对计数显著下降 | 第62-64页 |
3.4 原发感染者HIV特异性CD8~+T细胞功能耗竭标志物PD-1表达 | 第64-65页 |
3.5 原发感染者HIV特异性CD8~+T细胞分泌细胞因子功能 | 第65页 |
3.6 原发感染者HIV特异性CD8~+T细胞增殖功能 | 第65-66页 |
3.7 原发感染者HIV特异性CD8~+T细胞脱颗粒功能 | 第66-67页 |
4 讨论 | 第67-71页 |
5 结论 | 第71-72页 |
本研究创新性的自我评价 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-82页 |
综述 | 第82-98页 |
参考文献 | 第93-98页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第98-100页 |
致谢 | 第100-101页 |
个人简历 | 第101页 |