| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-15页 |
| 第一部分 miR-125a调节TRXR1基因表达的功能鉴定 | 第15-38页 |
| 1 前言 | 第15-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-30页 |
| 2.1 细胞系 | 第16页 |
| 2.2 主要的分子生物学相关实验材料 | 第16-19页 |
| 2.3 生物信息学网址和计算机分析软件 | 第19页 |
| 2.4 实验方法 | 第19-30页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第19页 |
| 2.4.2 microRNA结合位点预测 | 第19-20页 |
| 2.4.3 载体构建 | 第20-24页 |
| 2.4.4 双荧光素酶报告基因检测 | 第24-25页 |
| 2.4.5 Real-timeRT-PCR检测mRNA表达水平 | 第25-27页 |
| 2.4.6 Western印迹杂交检测 | 第27-30页 |
| 2.4.7 统计学分析 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-35页 |
| 3.1 TRXR13′-UTR的miRNA结合位点预测 | 第30-32页 |
| 3.2 miR-125a靶向结合TRXR13′-UTR | 第32-34页 |
| 3.3 miR-125a抑制内源性TRXR1表达 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-37页 |
| 5 结论 | 第37-38页 |
| 第二部分 miR-125a参与H_2O_2诱导的TRXR1表达调控机制研究 | 第38-54页 |
| 1 前言 | 第38-39页 |
| 2 材料和方法 | 第39-46页 |
| 2.1 细胞系 | 第39页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第39-41页 |
| 2.3 相关生物信息学网址和在线分析软件 | 第41页 |
| 2.4 实验方法 | 第41-46页 |
| 2.4.1 细胞培养 | 第41-42页 |
| 2.4.2 miR-125a启动子载体构建 | 第42-43页 |
| 2.4.3 荧光素酶报告基因实验检测H_2O_2对miR-125a启动子的作用 | 第43-44页 |
| 2.4.4 Western印迹杂交检测H_2O_2对TrxR1蛋白表达的影响 | 第44页 |
| 2.4.5 Real-timeRT-PCR检测TRXR1及miR-125amRNA表达 | 第44-46页 |
| 2.4.6 RT-PCR检测pri-miRNA-125a | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-51页 |
| 3.1 H_2O_2上调TRXR1mRNA及蛋白表达 | 第46-47页 |
| 3.2 转录后调节参与H_2O_2诱导的TrxR1表达 | 第47-48页 |
| 3.3 H_2O_2下调miR-125a的表达 | 第48页 |
| 3.4 miR-125a抑制H_2O_2诱导的TrxR1表达 | 第48-49页 |
| 3.5 miR-125a启动子报告基因构建及活性初步分析 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 第三部分 miR-125a调控TrxR1在原发性高血压中的作用初探 | 第54-64页 |
| 1 前言 | 第54-55页 |
| 2 材料和方法 | 第55-58页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第55-56页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第56页 |
| 2.3 其它检测指标及方法 | 第56-58页 |
| 2.3.1 Real-timeRT-PCR方法检测血清miR-125a表达 | 第56-57页 |
| 2.3.2 血清总抗氧化能力（T-AOC）及超氧化物歧化酶（SOD）活性检测 | 第57页 |
| 2.3.3 血清TrxR活性检测 | 第57-58页 |
| 2.3.4 统计分析软件 | 第58页 |
| 3 结果 | 第58-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 综述 | 第71-78页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 在学期间科研成绩 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
