| 研究生导师及课题指导小组成员介绍 | 第3-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩写符号说明 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 GSK-3β抑制剂对糖尿病大鼠视网膜病变及自噬相关蛋白表达变化的影响 | 第18-36页 |
| 1 实验材料 | 第18-21页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 试剂 | 第18-19页 |
| 1.3 试剂配制 | 第19-20页 |
| 1.4 实验用仪器设备 | 第20-21页 |
| 2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.1 DM模型建立及分组 | 第21页 |
| 2.2 血糖检测 | 第21页 |
| 2.3 大鼠血清生化指标检测 | 第21页 |
| 2.4 裂隙灯观察大鼠视网膜变化 | 第21-22页 |
| 2.5 标本收集 | 第22页 |
| 2.6 病理组织切片观察视网膜血管增生情况 | 第22页 |
| 2.7 蛋白质印迹法(WesternBlotting,WB)测蛋白含量 | 第22-25页 |
| 2.8 免疫组织化学法(IHC) | 第25-26页 |
| 2.9 统计学分析 | 第26页 |
| 3 实验结果 | 第26-33页 |
| 3.1 实验期间大鼠的一般状况 | 第26页 |
| 3.2 大鼠体重及血糖指标的测定结果 | 第26-27页 |
| 3.3 大鼠血管内皮因子和缺氧诱导因子检测结果 | 第27页 |
| 3.4 裂隙灯观察大鼠视网膜变化 | 第27-28页 |
| 3.5 糖尿病大鼠视网膜病理结构的变化 | 第28-29页 |
| 3.6 WesternBloting检测糖尿病大鼠视网膜GSK-3β以及自噬相关蛋白表达变化 | 第29-30页 |
| 3.7 免疫组化(IHC)检测糖尿病大鼠视网膜相关蛋白表达变化 | 第30-33页 |
| 4 讨论 | 第33-36页 |
| 第二章 高糖条件下大鼠视网膜血管内皮细胞GSK-3β蛋白变化以及自噬相关蛋白变化 | 第36-42页 |
| 1 实验材料 | 第36-37页 |
| 1.1 细胞株及细胞培养 | 第36页 |
| 1.2 药品及试剂 | 第36页 |
| 1.3 试剂配制 | 第36-37页 |
| 1.4 仪器设备 | 第37页 |
| 2 实验方法 | 第37-38页 |
| 2.1 IC50的测定 | 第37页 |
| 2.2 分组及处理 | 第37页 |
| 2.3 MTT法检测甲异靛对大鼠RMEC细胞增殖率的影响 | 第37-38页 |
| 2.4 WesternBloting检测甲异靛对高糖条件下大鼠视网膜血管内皮细胞GSK-3β及自噬相关蛋白表达的影响 | 第38页 |
| 2.5 统计学分析 | 第38页 |
| 3 实验结果 | 第38-40页 |
| 3.1 甲异靛对RMEC的IC_(50) | 第38-39页 |
| 3.2 甲异靛对细胞增殖率的影响 | 第39页 |
| 3.3 WesternBloting检测高糖条件下大鼠视网膜血管内皮细胞GSK-3β蛋白及自噬相关蛋白的变化 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 化合物M-286对AGEs诱导大鼠视网膜血管内皮细胞凋亡的影响 | 第42-50页 |
| 1 实验材料 | 第42-43页 |
| 1.1 细胞株及细胞培养 | 第42页 |
| 1.2 药品及试剂 | 第42页 |
| 1.3 仪器设备 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-44页 |
| 2.1 实验分组 | 第43页 |
| 2.2 IC_(50)的测定 | 第43页 |
| 2.3 MTT法检测细胞存活率 | 第43页 |
| 2.4 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第43-44页 |
| 2.5 细胞内活性氧ROS含量检测 | 第44页 |
| 2.6 统计学分析 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44-47页 |
| 3.1 化合物M-286对RMEC的IC50 | 第44-45页 |
| 3.2 化合物M-286对AGEs诱导后RMEC存活率 | 第45页 |
| 3.3 化合物M-286对AGEs处理后RMEC凋亡的影响 | 第45-46页 |
| 3.4 化合物M-286对AGEs诱导后RMEC内ROS的影响 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
