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miR-200a、miR-877逆转MCF-7/ADR细胞耐药性及分子机制研究

摘要第5-9页
Abstract第9-13页
第一章 序言第17-22页
    1.1 研究目的第17页
    1.2 研究背景第17-21页
    1.3 研究方法第21页
    1.4 研究路线第21-22页
第二章 MCF-7/ADR细胞耐药性的鉴定第22-40页
    2.1 前言第22页
    2.2 实验材料第22-23页
        2.2.1 主要实验细胞第22-23页
        2.2.2 主要仪器设备第23页
        2.2.3 主要试剂第23页
    2.3 实验方法第23-31页
        2.3.1 细胞培养第23-25页
        2.3.2 阿霉素处理24h后MCF-7与MCF-7/ADR细胞形态的变化第25页
        2.3.3 WST-1法检测MCF-7/ADR细胞的耐药性第25-26页
        2.3.4 流式细胞术检测细胞凋亡第26-27页
        2.3.5 耐药基因MDR1、MRP1与BCRP的鉴定第27-30页
        2.3.6 流式细胞仪检测细胞内阿霉素蓄积量第30-31页
        2.3.7 数据统计学分析第31页
    2.4 结果第31-38页
        2.4.1 MCF-7/ADR细胞具有耐阿霉素特性第31-33页
        2.4.2 MCF-7/ADR细胞具有稳定的耐药性第33-34页
        2.4.3 MCF-7/ADR细胞不容易发生细胞凋亡第34-36页
        2.4.4 MCF-7/ADR细胞内耐药基因MRP1与MDR1处于高表达水平第36页
        2.4.5 MCF-7/ADR细胞对阿霉素具有外排性第36-38页
    2.5 讨论第38-39页
    2.6 本章小结第39-40页
第三章 miR-200a、miR-877逆转MCF-7/ADR细胞耐药性的功能研究第40-67页
    3.1 前言第40页
    3.2 实验材料第40-42页
        3.2.1 主要实验细胞第40页
        3.2.2 主要仪器设备第40-41页
        3.2.3 主要试剂第41-42页
    3.3 实验方法第42-51页
        3.3.1 细胞转染第42-43页
        3.3.2 转染miR-200a与miR-877后MCF-7/ADR细胞中MDR1、MRP1与BCRP的变化情况第43-45页
        3.3.3 流式细胞仪检测细胞内阿霉素蓄积量第45页
        3.3.4 miR-200a与miR-877的增殖实验第45-46页
        3.3.5 流式细胞术检测细胞凋亡第46-47页
        3.3.6 流式细胞仪检测细胞周期第47-48页
        3.3.7 transwell小室检测细胞迁移第48-50页
        3.3.8 transwell小室检测细胞侵袭第50-51页
        3.3.9 统计学数据分析第51页
    3.4 结果第51-64页
        3.4.1 高表达miR-200a、低表达miR-877可使MCF-7/ADR细胞内MDR1、MRP1与BCRPmRNA表达水平下降第51-52页
        3.4.2 高表达miR-200a、低表达miR-877可促进MCF-7/ADR细胞对阿霉素的摄取第52-55页
        3.4.3 高表达miR-200a、低表达miR-877可增加MCF-7/ADR细胞对阿霉素的敏感性第55-56页
        3.4.4 高表达miR-200a、低表达miR-877可诱导MCF-7/ADR细胞发生凋亡第56-58页
        3.4.5 高表达miR-200a、低表达miR-877可使MCF-7/ADR细胞的细胞周期阻滞于G0/G1期第58-60页
        3.4.6 高表达miR-200a、低表达miR-877可抑制MCF-7/ADR细胞发生迁移第60-62页
        3.4.7 高表达miR-200a、低表达miR-877可抑制MCF-7/ADR细胞发生侵袭第62-64页
    3.5 讨论第64-66页
    3.6 小结第66-67页
第四章 结论与展望第67-69页
    4.1 结论第67-68页
    4.2 展望第68-69页
参考文献第69-74页
附录第74-75页
致谢第75-76页

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