摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
缩略语 | 第11-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-29页 |
1.1 胚乳的发育及组成 | 第13-14页 |
1.2 胚乳突变体的分类 | 第14-15页 |
1.3 淀粉 | 第15-19页 |
1.3.1 淀粉的组成与结构 | 第15-18页 |
1.3.2 淀粉的形态 | 第18页 |
1.3.3 淀粉的生物合成 | 第18-19页 |
1.4 淀粉合成关键酶及其调控 | 第19-24页 |
1.4.1 ADP-葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase) | 第19-20页 |
1.4.2 SS淀粉合酶(SS) | 第20-21页 |
1.4.3 淀粉分支酶(SBE) | 第21-22页 |
1.4.4 淀粉脱支酶(DBE) | 第22页 |
1.4.5 淀粉磷酸化酶 | 第22页 |
1.4.6 与淀粉合成相关其他的基因 | 第22-23页 |
1.4.7 淀粉合成基因的调控 | 第23-24页 |
1.5 稻米品质的评价指标 | 第24-26页 |
1.5.1 外观品质 | 第25页 |
1.5.2 蒸煮和食味品质 | 第25-26页 |
1.6 水稻Dull基因的研究进展 | 第26-27页 |
1.7 本研究的目的及意义 | 第27-29页 |
第二章 材料与方法 | 第29-39页 |
2.1 植物材料 | 第29页 |
2.1.1 材料来源 | 第29页 |
2.1.2 定位群体的构建 | 第29页 |
2.2 实验方法 | 第29-39页 |
2.2.1 碘-碘化钾染色 | 第29页 |
2.2.2 成熟种子横断面的扫描电镜观察 | 第29-30页 |
2.2.3 直链淀粉含量的测定 | 第30页 |
2.2.4 总淀粉含量测定 | 第30-31页 |
2.2.5 总蛋白质含量测定 | 第31页 |
2.2.6 支链淀粉链长分布测定 | 第31-32页 |
2.2.7 尿素膨胀实验 | 第32-33页 |
2.2.8 快速粘度分析仪(Rapid visco analyzer,RVA)分析 | 第33页 |
2.2.9 蛋白的SDS-PAGE凝胶电泳 | 第33-34页 |
2.2.10 GBSS蛋白的SDS-PAGE分析 | 第34页 |
2.2.11 植物基因组DNA提取 | 第34-35页 |
2.2.12 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第35-37页 |
2.2.13 基因定位 | 第37-39页 |
第三章 结果与分析 | 第39-53页 |
3.1 w54的表型分析 | 第39-40页 |
3.2 成熟种子的扫描电镜观察 | 第40-41页 |
3.3 细胞学观察 | 第41-42页 |
3.4 总淀粉和直链淀粉含量测定 | 第42页 |
3.5 支链淀粉链长分布 | 第42-43页 |
3.6 尿素膨胀实验 | 第43-45页 |
3.7 总蛋白含量测定及SDS-PAGE分析 | 第45页 |
3.8 RVA谱分析 | 第45-46页 |
3.9 野生型和突变体GBSSI的转录水平分析 | 第46-47页 |
3.10 GBSS蛋白的SDS-PAGE分析 | 第47-48页 |
3.11 w54 的遗传分析 | 第48页 |
3.12 w54的基因定位 | 第48-50页 |
3.12.1 w54的初定位 | 第48-49页 |
3.12.2 w54的精细定位 | 第49-50页 |
3.13 w54的定位区间基因预测 | 第50-53页 |
第四章 小结与讨论 | 第53-57页 |
4.1 小结 | 第53页 |
4.2 讨论 | 第53-57页 |
4.2.1 w54是一个暗胚乳突变体 | 第53页 |
4.2.2 w54是一个控制dull性状的新位点 | 第53-54页 |
4.2.3 w54影响了淀粉的生物合成 | 第54页 |
4.2.4 暗胚乳突变体的应用价值 | 第54-55页 |
4.2.5 本研究的创新与不足之处 | 第55-57页 |
第五章 水稻小粒矮杆突变体sgd1(t)的图位克隆 | 第57-63页 |
5.1 引言部分 | 第57-59页 |
5.2 结果与讨论部分 | 第59-63页 |
5.2.1 定位群体构建 | 第59页 |
5.2.2 表型分析 | 第59-60页 |
5.2.3 基因精细定位 | 第60-61页 |
5.2.4 讨论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-73页 |
附录 | 第73-77页 |
附录1 胚乳半薄切片制备 | 第73页 |
附录2 RNA的提取、RT-PCR以及Real-time PCR | 第73-77页 |
致谢 | 第77页 |