| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 符号及缩略词 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-30页 |
| 1 蜂胶的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.1 蜂胶的活性成分 | 第16页 |
| 1.2 蜂胶的药理作用 | 第16-17页 |
| 2 蜂胶黄酮的研究进展 | 第17-20页 |
| 2.1 蜂胶黄酮类的结构与组成 | 第18页 |
| 2.2 黄酮的药理作用 | 第18-20页 |
| 2.3 毒副作用 | 第20页 |
| 3 脂质体 | 第20-23页 |
| 3.1 脂质体的组成 | 第20页 |
| 3.2 脂质体的制备 | 第20-21页 |
| 3.3 脂质体的应用 | 第21-22页 |
| 3.4 脂质体的未来 | 第22-23页 |
| 3.5 脂质体的问题 | 第23页 |
| 4 本研究的目的意义 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-30页 |
| 第二章 蜂胶黄酮脂质的制备及其物理性状 | 第30-40页 |
| 1 材料和方法 | 第30-32页 |
| 1.1 主要试剂 | 第30页 |
| 1.2 主要仪器 | 第30-31页 |
| 1.3 脂质体制备 | 第31页 |
| 1.4 脂质体粒径及电势大小测定 | 第31页 |
| 1.5 透射电镜法观察脂质体的形态 | 第31页 |
| 1.6 高效液相色谱检测方法的建立 | 第31-32页 |
| 1.7 试管离心法测定蜂胶黄酮脂质体体外释放度 | 第32页 |
| 2 结果与讨论 | 第32-37页 |
| 2.1 脂质体粒径 | 第32-33页 |
| 2.2 脂质体形态 | 第33页 |
| 2.3 高效液相色谱法的建立 | 第33-36页 |
| 2.4 蜂胶黄酮脂质体体外释放度测定 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 第三章 蜂胶黄酮脂质体对小鼠脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第40-50页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 1.1 药物准备 | 第41页 |
| 1.2 主要仪器 | 第41页 |
| 1.3 主要试剂 | 第41-43页 |
| 1.4 脾脏淋巴细胞的培养 | 第43页 |
| 1.5 药物单独刺激脾脏淋巴细胞的测定 | 第43页 |
| 1.6 药物协同PHA刺激脾脏淋巴细胞的测定 | 第43页 |
| 1.7 药物协同LPS刺激脾脏淋巴细胞的测定 | 第43-44页 |
| 1.8 数据分析 | 第44页 |
| 2 结果 | 第44-46页 |
| 2.1 药物单独作用对脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第44-45页 |
| 2.2 药物协同PHA作用对脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第45页 |
| 2.3 药物协同LPS作用对脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 第四章 蜂胶黄酮脂质体对小鼠骨髓树突状细胞的影响 | 第50-60页 |
| 1 材料与方法 | 第50-53页 |
| 1.1 试验药物 | 第51页 |
| 1.2 主要试剂 | 第51页 |
| 1.3 主要仪器 | 第51页 |
| 1.4 试验动物 | 第51页 |
| 1.5 小鼠骨髓树突状细胞的培养 | 第51-52页 |
| 1.6 小鼠骨髓DCs刺激脾脏淋巴细胞增殖试验 | 第52页 |
| 1.7 小鼠骨髓DCs抗原提呈能力测定 | 第52-53页 |
| 1.8 小鼠骨髓DCs表面分子测定 | 第53页 |
| 1.9 统计分析 | 第53页 |
| 2 结果 | 第53-56页 |
| 2.1 蜂胶黄酮脂质体对小鼠骨髓DCs刺激淋巴细胞增殖的影响 | 第53-54页 |
| 2.2 蜂胶黄酮脂质体对小鼠骨髓DCs提呈抗原能力的影响 | 第54页 |
| 2.3 蜂胶黄酮脂质体对小鼠骨髓DCs表面分子表达的影响 | 第54-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 第五章 蜂胶黄酮脂质体对小鼠腹腔巨噬细胞功能的影响 | 第60-68页 |
| 1 材料和方法 | 第60-62页 |
| 1.1 药物准备 | 第60页 |
| 1.2 主要试剂 | 第60-61页 |
| 1.3 主要仪器 | 第61页 |
| 1.4 小鼠腹腔巨噬细胞的培养 | 第61页 |
| 1.5 IFN-γ、IL-1α、IL-6、IL-12和TNF-α的测定 | 第61页 |
| 1.6 大肠杆菌吞噬实验 | 第61页 |
| 1.7 数据分析 | 第61-62页 |
| 2 结果 | 第62-65页 |
| 2.1 蜂胶黄酮脂质体对IFN-γ等细胞因子的影响 | 第62-64页 |
| 2.2 蜂胶黄酮脂质体对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-68页 |
| 第六章 蜂胶黄酮脂质体对OVA免疫效果的影响 | 第68-78页 |
| 1 材料与方法 | 第68-70页 |
| 1.1 药物准备 | 第68-69页 |
| 1.2 主要试剂 | 第69页 |
| 1.3 主要仪器 | 第69页 |
| 1.4 动物分组及处理 | 第69页 |
| 1.5 IL-4和IFN-γ浓度的测定 | 第69页 |
| 1.6 IgG浓度的测定 | 第69页 |
| 1.7 小鼠脾脏淋巴细胞转化试验 | 第69-70页 |
| 1.8 数据处理 | 第70页 |
| 2 结果 | 第70-73页 |
| 2.1 淋巴细胞增殖的动态变化 | 第70-72页 |
| 2.2 细胞因子IL-4和IFN-γ浓度的动态变化 | 第72-73页 |
| 2.3 IgG的浓度动态变化 | 第73页 |
| 3 讨论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 全文结论 | 第78-79页 |
| 论文创新点 | 第79-80页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
