| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第11-16页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 蓝莓产业现状 | 第11-12页 |
| 1.3 灰葡萄孢霉研究进展 | 第12-13页 |
| 1.4 五倍子研究进展 | 第13页 |
| 1.5 抑菌机制研究进展 | 第13-14页 |
| 1.6 研究内容及意义 | 第14-16页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第14页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第14-16页 |
| 第2章 天然抑菌试材的筛选 | 第16-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第16页 |
| 2.1.2 供试菌种 | 第16页 |
| 2.1.3 试剂与仪器设备 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-18页 |
| 2.2.1 培养基 | 第17页 |
| 2.2.2 病原菌的培养 | 第17页 |
| 2.2.3 材料的预处理 | 第17页 |
| 2.2.4 抑菌试验 | 第17-18页 |
| 2.3 结果与分析 | 第18-19页 |
| 2.4 本章小结 | 第19-21页 |
| 第3章 五倍子活性物质提取及稳定性 | 第21-27页 |
| 3.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第21页 |
| 3.1.2 试剂与仪器设备 | 第21页 |
| 3.1.3 培养基 | 第21页 |
| 3.1.4 病原菌培养 | 第21页 |
| 3.1.5 五倍子预处理 | 第21-22页 |
| 3.2 提取工艺优化 | 第22-23页 |
| 3.2.1 超声时间 | 第22页 |
| 3.2.2 料液比 | 第22页 |
| 3.2.3 乙醇浓度 | 第22页 |
| 3.2.4 超声温度 | 第22-23页 |
| 3.3 结果与分析 | 第23-25页 |
| 3.3.1 提取条件优化 | 第23-24页 |
| 3.3.2 温度对五倍子提取液稳定性的影响 | 第24页 |
| 3.3.3 pH对五倍子提取液稳定性的影响 | 第24-25页 |
| 3.3.4 光照时间对五倍子提取液稳定性的影响 | 第25页 |
| 3.4 本章小结 | 第25-27页 |
| 第4章 五倍子提取液抑菌机理 | 第27-37页 |
| 4.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 4.1.1 供试材料 | 第27页 |
| 4.1.2 供试菌种 | 第27页 |
| 4.1.3 试剂与仪器设备 | 第27页 |
| 4.1.4 培养基 | 第27页 |
| 4.1.5 病原菌的培养 | 第27-28页 |
| 4.2 实验方法 | 第28-30页 |
| 4.2.1 五倍子提取物分级萃取 | 第28页 |
| 4.2.2 相对电导率的测定 | 第28页 |
| 4.2.3 丙二醛(MDA)活性的测定 | 第28-29页 |
| 4.2.4 可溶性蛋白含量的测定 | 第29页 |
| 4.2.5 总ATP酶活性的测定 | 第29页 |
| 4.2.6 琥珀酸脱氢酶(SDH)的测定 | 第29页 |
| 4.2.7 碱性磷酸酶(AKP)的测定 | 第29页 |
| 4.2.8 扫描电镜观察细胞菌丝形态 | 第29-30页 |
| 4.2.9 透射电镜观察细胞超微结构 | 第30页 |
| 4.3 结果与分析 | 第30-36页 |
| 4.3.1 不同萃取相的抑菌效果 | 第30-31页 |
| 4.3.2 五倍子提取液对灰葡萄孢霉相对电导率的影响 | 第31页 |
| 4.3.3 五倍子提取液对灰葡萄孢霉丙二醛(MDA)影响 | 第31-32页 |
| 4.3.4 五倍子提取液对灰葡萄孢霉ATP酶的影响 | 第32-33页 |
| 4.3.5 五倍子提取液对灰葡萄孢霉可溶性蛋白的影响 | 第33页 |
| 4.3.6 五倍子提取液对灰葡萄孢霉碱性磷酸酶(AKP)的影响 | 第33-34页 |
| 4.3.7 五倍子提取液对灰葡萄孢霉琥珀酸脱氢酶(SDH)的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.8 电镜观察结果 | 第35-36页 |
| 4.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第5章 五倍子提取液对蓝莓采后病害和品质的影响研究 | 第37-50页 |
| 5.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 5.1.1 供试材料 | 第37页 |
| 5.1.2 供试菌种 | 第37页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第37页 |
| 5.1.4 培养基 | 第37页 |
| 5.1.5 病原菌培养 | 第37-38页 |
| 5.2 蓝莓果实处理 | 第38页 |
| 5.3 试验方法 | 第38-41页 |
| 5.3.1 失重率和腐烂率 | 第38页 |
| 5.3.2 可滴定酸含量(TA)和可溶性固形物(TSS) | 第38页 |
| 5.3.3 花色苷含量测定 | 第38-39页 |
| 5.3.4 相对电导率测定 | 第39页 |
| 5.3.5 MDA测定 | 第39页 |
| 5.3.6 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第39页 |
| 5.3.7 维生素C含量 | 第39-40页 |
| 5.3.8 O_2~-生成速率 | 第40页 |
| 5.3.9 过氧化物酶(POD)活性测定 | 第40页 |
| 5.3.10 多酚氧化酶(PPO)活性测定 | 第40-41页 |
| 5.3.11 过氧化氢酶(CAT)活性测定 | 第41页 |
| 5.3.12 苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性测定 | 第41页 |
| 5.4 结果与分析 | 第41-48页 |
| 5.4.1 蓝莓果实失重率、腐烂率 | 第41-42页 |
| 5.4.2 蓝莓果实可滴定酸(TA)和可溶性固形物(TSS)的变化 | 第42-43页 |
| 5.4.3 蓝莓果实VC的变化 | 第43页 |
| 5.4.4 蓝莓果实花色苷的变化 | 第43-44页 |
| 5.4.5 蓝莓果实电导率、丙二醛的变化 | 第44-45页 |
| 5.4.6 蓝莓果实超氧阴离子(O2-)的变化 | 第45-46页 |
| 5.4.7 蓝莓果实超氧化物歧化酶(SOD)的变化 | 第46-47页 |
| 5.4.8 蓝莓POD、PPO、CAT、PAL的变化 | 第47-48页 |
| 5.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 第6章 结论与展望 | 第50-52页 |
| 6.1 结论 | 第50页 |
| 6.2 展望 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 附录Ⅰ 主要试剂 | 第58-59页 |
| 附录Ⅱ 主要仪器设备 | 第59页 |
