| 致谢 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第1章 绪论 | 第19-27页 |
| 1.1 鞘脂类化合物的代谢与功能研究 | 第19-22页 |
| 1.2 鞘脂类化合物的种类及研究方法 | 第22-23页 |
| 1.3 鞘脂类代谢相关酶类的研究进展 | 第23-26页 |
| 1.3.1 神经酰胺合成酶 | 第23-25页 |
| 1.3.2 神经酰胺酶 | 第25-26页 |
| 1.4 本实验研究目的与意义 | 第26-27页 |
| 第2章 褐飞虱鞘脂类物质的种类和含量研究 | 第27-41页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-31页 |
| 2.1.1 昆虫种群及饲养 | 第27-28页 |
| 2.1.2 试剂和仪器 | 第28页 |
| 2.1.3 褐飞虱鞘脂类的抽提 | 第28-29页 |
| 2.1.4 褐飞虱鞘脂类的检测与鉴定 | 第29页 |
| 2.1.5 褐飞虱各龄期鞘脂类物质含量测定 | 第29-31页 |
| 2.2 结果与分析 | 第31-38页 |
| 2.2.1 褐飞虱中鞘脂类组的鉴定 | 第31-35页 |
| 2.2.2 褐飞虱各龄期神经酰胺类含量 | 第35-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-41页 |
| 第3章 褐飞虱鞘脂类代谢相关基因 | 第41-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第41-45页 |
| 3.1.1 昆虫的饲养 | 第41页 |
| 3.1.2 褐飞虱鞘脂类代谢相关基因序列的筛选与矫正 | 第41-42页 |
| 3.1.3 褐飞虱鞘脂类代谢相关基因的系统发育分析 | 第42页 |
| 3.1.4 褐飞虱各龄期各组织鞘脂类代谢基因表达 | 第42-45页 |
| 3.2 结果与分析 | 第45-56页 |
| 3.2.1 褐飞虱鞘脂类代谢途径相关基因 | 第45-48页 |
| 3.2.2 褐飞虱鞘脂类代谢基因进化关系分析 | 第48-54页 |
| 3.2.3 鞘脂类基因在褐飞虱中的时空表达 | 第54-56页 |
| 3.3 小结与讨论 | 第56-58页 |
| 第4章 褐飞虱神经酰胺酶(NlCDase)功能 | 第58-77页 |
| 4.1 材料与方法 | 第59-67页 |
| 4.1.1 材料 | 第59页 |
| 4.1.2 NlCDase基因的克隆 | 第59-61页 |
| 4.1.3 NlCDase基因的时空表达 | 第61页 |
| 4.1.4 皮尔森(Pearson)相关系数分析 | 第61页 |
| 4.1.5 dsRNA的合成 | 第61-62页 |
| 4.1.6 显微注射 | 第62-63页 |
| 4.1.7 注射后干扰效率的检测 | 第63页 |
| 4.1.8 注射dsRNA后生测试验 | 第63-64页 |
| 4.1.9 注射dsRNA后褐飞虱卵巢发育检测 | 第64页 |
| 4.1.10 注射dsRNA后褐飞虱组织凋亡的检测 | 第64-66页 |
| 4.1.11 NlCDase干扰后鞘脂类含量测定 | 第66页 |
| 4.1.12 体外神经酰胺的饲喂 | 第66-67页 |
| 4.2 结果分析 | 第67-75页 |
| 4.2.1 褐飞虱各龄期神经酰胺含量与NlCDase表达的皮尔森相关系数分析 | 第67-68页 |
| 4.2.2 NlCDase降低对褐飞虱生长发育的影响 | 第68-71页 |
| 4.2.3 NlCDase的降低对褐飞虱的卵黄原蛋白基因表达的影响 | 第71-72页 |
| 4.2.4 NlCDase的表达降低导致神经酰胺的含量升高 | 第72-73页 |
| 4.2.5 高水平的神经酰胺导致褐飞虱的产卵量降低 | 第73-74页 |
| 4.2.6 NlCDase的降低引发褐飞虱卵巢的凋亡反应 | 第74-75页 |
| 4.3 小结与讨论 | 第75-77页 |
| 第5章 褐飞虱神经酰胺合成酶(NlCerS)的功能 | 第77-93页 |
| 5.1 材料与方法 | 第77-80页 |
| 5.1.1 材料 | 第77页 |
| 5.1.2 基因的克隆 | 第77页 |
| 5.1.3 基因的时空表达 | 第77-78页 |
| 5.1.4 dsRNA的合成 | 第78页 |
| 5.1.5 显微注射 | 第78页 |
| 5.1.6 干扰效率的检测 | 第78页 |
| 5.1.7 基因干扰后生测 | 第78页 |
| 5.1.8 注射dsRNA后褐飞虱卵巢发育检测 | 第78-79页 |
| 5.1.9 抑制剂处理 | 第79页 |
| 5.1.10 抑制剂处理后鞘脂类代谢相关酶的表达量检测 | 第79页 |
| 5.1.11 NlCerS干扰后鞘脂类含量测定 | 第79页 |
| 5.1.12 注射dsRNA后褐飞虱组织凋亡的检测 | 第79-80页 |
| 5.2 结果与分析 | 第80-90页 |
| 5.2.1 褐飞虱CerS基因序列分析 | 第80页 |
| 5.2.2 时空表达 | 第80-81页 |
| 5.2.3 基因沉默效率及基因干扰后对褐飞虱生长发育的影响 | 第81-82页 |
| 5.2.4 MCerS与NlCerS-like基因干扰后对卵巢发育的影响 | 第82-83页 |
| 5.2.5 MCerS与NlCerS-like基因干扰后对卵黄原蛋白表达的影响 | 第83-84页 |
| 5.2.6 抑制剂FB1、Myriocin对鞘脂类基因表达量的影响 | 第84-86页 |
| 5.2.7 抑制剂FB1、Myriocin对褐飞虱产卵量的影响 | 第86页 |
| 5.2.8 干扰NlCerS基因后鞘脂类物质变化 | 第86-89页 |
| 5.2.9 NlCerS的降低引发褐飞虱卵巢的凋亡反应 | 第89-90页 |
| 5.3 小结与讨论 | 第90-93页 |
| 第6章 总结与讨论 | 第93-97页 |
| 6.1 结论与讨论 | 第93-95页 |
| 6.1.1 褐飞虱鞘脂类物质鉴定及代谢基因分析 | 第93页 |
| 6.1.2 过量的神经酰胺抑制褐飞虱的卵巢发育 | 第93-94页 |
| 6.1.3 神经酰胺的降低抑制褐飞虱的卵巢发育 | 第94-95页 |
| 6.2 创新之处 | 第95页 |
| 6.3 进一步的研究方向 | 第95-97页 |
| 参考文献 | 第97-100页 |
| 附录S1 | 第100-101页 |
| 发表文章 | 第101页 |
