致谢 | 第6-7页 |
摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
缩略语表 | 第13-20页 |
1 引言 | 第20-39页 |
1.1 高温胁迫对植物叶片光合作用的影响 | 第20-22页 |
1.1.1 高温胁迫对光合作用原初反应的影响 | 第20-21页 |
1.1.2 高温胁迫对光合作用碳同化过程的影响 | 第21-22页 |
1.1.3 高温胁迫对光合器官结构的影响 | 第22页 |
1.2 高温胁迫对植物体内活性氧清除系统的影响 | 第22-32页 |
1.2.1 植物体内活性氧的产生 | 第22-24页 |
1.2.2 活性氧的作用 | 第24-25页 |
1.2.3 植物体内活性氧清除系统 | 第25-26页 |
1.2.4 抗坏血酸-谷胱甘肽循环在活性氧清除系统中的作用 | 第26-32页 |
1.2.4.1 抗坏血酸的生物合成 | 第27-29页 |
1.2.4.2 抗坏血酸-谷胱甘肽循环清除过氧化氢的过程 | 第29页 |
1.2.4.3 抗坏血酸过氧化物酶的细胞分布及酶学特性 | 第29页 |
1.2.4.4 植物细胞质型APX同工酶的表达调控 | 第29-31页 |
1.2.4.5 植物叶绿体APX同工酶的表达调控 | 第31-32页 |
1.3 热激转录因子在植物高温逆境中的作用 | 第32-35页 |
1.3.1 热激转录因子的种类及结构 | 第32-33页 |
1.3.2 热激转录因子的功能 | 第33页 |
1.3.3 组成型表达的热激转录因子在高温胁迫下的作用 | 第33-34页 |
1.3.4 诱导型表达的热激转录因子在高温胁迫下的作用 | 第34-35页 |
1.4 热激转录因子在活性氧信号传导中的作用 | 第35页 |
1.5 环境条件对果树源库关系及果实品质的影响 | 第35-38页 |
1.5.1 源库概念 | 第35-36页 |
1.5.2 源库关系及影响因素 | 第36-37页 |
1.5.3 果实品质形成 | 第37-38页 |
1.6 立题意义及研究内容 | 第38-39页 |
2 高温胁迫对砂梨叶肉细胞超微结构及光系统活性的影响 | 第39-53页 |
2.1 材料与处理 | 第40页 |
2.2 试验方法 | 第40-41页 |
2.2.1 叶肉细胞超微结构观察 | 第41页 |
2.2.2 叶绿素相对含量的测定 | 第41页 |
2.2.3 净光合速率的测定 | 第41页 |
2.2.4 叶绿素荧光参数的测定 | 第41页 |
2.3 结果与分析 | 第41-51页 |
2.3.1 短期持续高温胁迫对砂梨叶肉细胞超微结构的影响 | 第42-45页 |
23.2 短期持续高温胁迫对砂梨叶片叶绿素相对含量的影响 | 第45-46页 |
2.3.3 短期持续高温胁迫对光系统Ⅱ最大光化学效率的影响 | 第46-47页 |
2.3.4 长时间高温胁迫对砂梨叶肉细胞超微结构的影响 | 第47-49页 |
2.3.5 长时间高温胁迫对砂梨叶片净光合速率的影响 | 第49-50页 |
2.3.6 长时间高温胁迫对光系统Ⅱ最大光化学效率的影响 | 第50-51页 |
2.4 讨论 | 第51-53页 |
3 高温胁迫对砂梨叶片抗坏血酸过氧化物酶活性及基因表达的影响 | 第53-76页 |
3.1 材料与处理 | 第53页 |
3.2 试验方法 | 第53-59页 |
3.2.1 丙二醛含量的测定 | 第53-54页 |
3.2.2 砂梨叶片中过氧化氢的观测 | 第54页 |
3.2.3 抗坏血酸过氧化物酶活性测定 | 第54页 |
3.2.4 抗坏血酸过氧化物酶基因成员的克隆 | 第54-56页 |
3.2.4.1 总RNA的提取 | 第54页 |
3.2.4.2 cDNA合成 | 第54-55页 |
3.2.4.3 抗坏血酸过氧化物酶基因中间片段扩增 | 第55页 |
3.2.4.4 抗坏血酸过氧化物酶基因3’RACE扩增 | 第55页 |
3.2.4.5 抗坏血酸过氧化物酶基因5’RACE扩增 | 第55页 |
3.2.4.6 抗坏血酸过氧化物酶基因全长扩增 | 第55-56页 |
3.2.5 抗坏血酸过氧化物酶基因启动子的克隆 | 第56-57页 |
3.2.6 抗坏血酸过氧化物酶的亚细胞定位 | 第57-58页 |
3.2.6.1 开放阅读框的扩增 | 第57页 |
3.2.6.2 重组质粒双酶切 | 第57-58页 |
3.2.6.3 植物表达载体的构建 | 第58页 |
3.2.6.4 烟草瞬时表达 | 第58页 |
3.2.7 抗坏血酸过氧化物酶基因成员的表达分析 | 第58-59页 |
3.3 结果与分析 | 第59-73页 |
3.3.1 高温胁迫对砂梨叶片中丙二醛含量的影响 | 第59-60页 |
3.3.2 高温胁迫对砂梨叶片中过氧化氢积累的影响 | 第60-61页 |
3.3.3 高温胁迫抗坏血酸过氧化物酶活性的影响 | 第61-62页 |
3.3.4 抗坏血酸过氧化物酶基因的克隆 | 第62-64页 |
3.3.5 抗坏血酸过氧化物酶基因启动子的克隆 | 第64-69页 |
3.3.6 抗坏血酸过氧化物酶的亚细胞定位 | 第69-70页 |
3.3.7 高温胁迫对砂梨叶片抗坏血酸过氧化物酶基因表达的影响 | 第70-73页 |
3.4 讨论 | 第73-76页 |
4 亚高温锻炼和过氧化氢处理诱导砂梨叶片耐热性的蛋白质组学研究 | 第76-83页 |
4.1 材料与处理 | 第76页 |
4.2 试验方法 | 第76-77页 |
4.2.1 蛋白质样品制备 | 第76-77页 |
4.2.2 双向电泳及凝胶成像 | 第77页 |
4.2.3 凝胶图像分析 | 第77页 |
4.2.4 质谱鉴定差异表达的蛋白质点 | 第77页 |
4.2.5 热激转录因子的克隆及表达分析 | 第77页 |
4.3 结果与分析 | 第77-81页 |
4.3.1 亚高温锻炼和过氧化氢处理对‘翠冠’叶片耐热性的影响 | 第78-80页 |
4.3.2 高温胁迫下‘翠冠’梨叶片中差异表达蛋白的功能分类 | 第80页 |
4.3.3 高温胁迫下‘翠冠’梨叶片中热激转录因子的表达分析 | 第80-81页 |
4.4 讨论 | 第81-83页 |
5 果实膨大后期高温胁迫对‘园黄’梨叶片及果实中山梨醇代谢的影响 | 第83-103页 |
5.1 材料和处理 | 第83-84页 |
5.2 试验方法 | 第84-87页 |
5.2.1 叶片净光合速率的测定 | 第84-85页 |
5.2.2 果实大小、单果重和硬度的测定 | 第85页 |
5.2.3 叶片及果肉种可溶性糖的提取与测定 | 第85页 |
5.2.4 山梨醇代谢相关酶活性的测定 | 第85-86页 |
5.2.5 山梨醇代谢相关酶基因的克隆 | 第86-87页 |
5.2.5.1 总RNA的提取 | 第86页 |
5.2.5.2 cDNA合成 | 第86-87页 |
5.2.5.3 引物设计 | 第87页 |
5.2.6 山梨醇代谢相关酶基因的表达分析 | 第87页 |
5.2.7 数据分析 | 第87页 |
5.3 结果与分析 | 第87-100页 |
5.3.1 高温胁迫对‘园黄’梨果实生物量的影响 | 第88页 |
5.3.2 高温胁迫对‘园黄’梨果实硬度的影响 | 第88-89页 |
5.3.3 高温胁迫对‘园黄’梨叶片净光合速率的影响 | 第89-90页 |
5.3.4 高温胁迫对‘园黄’梨叶片蒸腾速率的影响 | 第90-91页 |
5.3.5 高温胁迫对‘园黄’梨叶片和果肉可溶性糖含量的影响 | 第91-94页 |
5.3.6 高温胁迫对山梨醇代谢相关酶活性的影响 | 第94-96页 |
5.3.7 山梨醇代谢相关酶及转运蛋白的基因克隆 | 第96-97页 |
5.3.8 高温胁迫对山梨醇代谢相关酶基因表达的影响 | 第97-99页 |
5.3.9 高温胁迫对山梨醇转运蛋白基因表达的影响 | 第99-100页 |
5.4 讨论 | 第100-103页 |
6 果实膨大后期高温胁迫对‘园黄’梨叶片和果实蔗糖代谢的影响 | 第103-113页 |
6.1 材料与处理 | 第103-104页 |
6.2 试验方法 | 第104-105页 |
6.2.1 蔗糖代谢相关酶粗提液的制备 | 第104页 |
6.2.2 中性转化酶活性的测定 | 第104页 |
6.2.3 酸性转化酶活性的测定 | 第104页 |
6.2.4 蔗糖合成酶活性的测定 | 第104-105页 |
6.2.5 蔗糖磷酸合成酶活性的测定 | 第105页 |
6.2.6 蔗糖合成酶和蔗糖磷酸合成酶基因的电子克隆 | 第105页 |
6.2.7 实时定量PCR | 第105页 |
6.2.8 数据分析 | 第105页 |
6.3 结果与分析 | 第105-110页 |
6.3.1 高温胁迫对叶片中蔗糖代谢相关酶活性的影响 | 第105-106页 |
6.3.2 高温胁迫对果肉中蔗糖代谢相关酶活性的影响 | 第106-108页 |
6.3.3 蔗糖合成酶和蔗糖磷酸合成酶基因的电子克隆 | 第108页 |
6.3.4 高温胁迫对叶片中蔗糖合成酶和蔗糖磷酸合成酶基因表达的影响 | 第108-109页 |
6.3.5 高温胁迫对果肉中蔗糖合成酶及蔗糖磷酸合成酶基因表达的影响 | 第109-110页 |
6.4 讨论 | 第110-113页 |
7 小结与展望 | 第113-115页 |
参考文献 | 第115-131页 |
作者简历 | 第131页 |
攻博期间科研成果 | 第131页 |