| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 图目录 | 第9-12页 |
| 表目录 | 第12-13页 |
| 主要符号对照表 | 第13-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 环杭州湾的工业发展与杭州湾的污染形势 | 第14-15页 |
| 1.2 微生物群落结构研究进展 | 第15-20页 |
| 1.2.1 微生物群落结构研究的技术手段 | 第15-19页 |
| 1.2.2 人为活动干扰区域微生物结构的研究 | 第19-20页 |
| 1.3 氨氧化微生物的研究进展 | 第20-25页 |
| 1.3.1 氨氧化古菌的发现 | 第21页 |
| 1.3.2 氨氧化微生物的分布情况 | 第21-22页 |
| 1.3.3 环境因子对氨氧化微生物结构与活性的影响 | 第22-25页 |
| 1.4 本研究意义、内容和技术路线 | 第25-27页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第25页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第26-27页 |
| 第2章 研究区域的确定与研究方法的建立 | 第27-38页 |
| 2.1 工业园区及典型企业的选取及概况 | 第27-29页 |
| 2.1.1 杭州湾上虞工业园区的选取与概况 | 第27-28页 |
| 2.1.2 典型企业的选取与概况 | 第28-29页 |
| 2.2 采样点分布及样品采集 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-38页 |
| 2.3.1 废水水质测定 | 第30页 |
| 2.3.2 纳污区域水体水质测定 | 第30-31页 |
| 2.3.3 潜在硝化速率测定 | 第31-32页 |
| 2.3.4 培养基 | 第32页 |
| 2.3.5 DNA 提取 | 第32页 |
| 2.3.6 RNA 提取及反转录 | 第32-33页 |
| 2.3.7 引物及 PCR 程序 | 第33页 |
| 2.3.8 克隆文库 | 第33-35页 |
| 2.3.9 Real-time PCR | 第35-36页 |
| 2.3.10 DNA 密度梯度离心 | 第36-37页 |
| 2.3.11 454 高通量测序 | 第37-38页 |
| 第3章 废水处理系统与废水排放点微生物群落结构的比较 | 第38-63页 |
| 3.1 样品选取与样品特性 | 第38-39页 |
| 3.2 实验内容 | 第39页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第39-62页 |
| 3.3.1 基因丰度 | 第39-41页 |
| 3.3.2 细菌群落多样性 | 第41-49页 |
| 3.3.3 古菌群落多样性 | 第49-55页 |
| 3.3.4 氨氧化细菌群落多样性 | 第55-59页 |
| 3.3.5 氨氧化古菌群落多样性 | 第59-62页 |
| 3.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第4章 纳污区域微生物群落结构的时空变化 | 第63-95页 |
| 4.1 样品选取与样品特性 | 第63-64页 |
| 4.2 实验内容 | 第64页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第64-93页 |
| 4.3.1 基因丰度 | 第64-67页 |
| 4.3.2 细菌群落结构的时空变化 | 第67-75页 |
| 4.3.3 古菌群落结构的时空变化 | 第75-82页 |
| 4.3.4 氨氧化细菌群落结构的时空变化 | 第82-87页 |
| 4.3.5 氨氧化古菌群落结构的时空变化 | 第87-93页 |
| 4.4 本章小结 | 第93-95页 |
| 第5章 环境因子对纳污区域氨氧化菌群结构及活性影响的实验研究 | 第95-125页 |
| 5.1 实验样品 | 第95页 |
| 5.2 实验设计 | 第95-98页 |
| 5.2.1 氨氮因素 | 第95-97页 |
| 5.2.2 温度因素 | 第97页 |
| 5.2.3 盐度因素 | 第97-98页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第98-123页 |
| 5.3.1 水体氨氮浓度对沉积物中氨氧化菌群结构及活性的影响 | 第98-115页 |
| 5.3.2 温度、盐度对沉积物中氨氧化菌群结构及活性的影响 | 第115-123页 |
| 5.4 本章小结 | 第123-125页 |
| 第6章 结论与建议 | 第125-128页 |
| 6.1 结论 | 第125-127页 |
| 6.2 建议 | 第127-128页 |
| 附录 | 第128-130页 |
| 参考文献 | 第130-143页 |
| 致谢 | 第143-145页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第145-146页 |
