摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
目录 | 第7-9页 |
縮略词表 | 第9-10页 |
前言 | 第10-12页 |
第一章 人BMSCs的分离培养及鉴定 | 第12-30页 |
1.1 实验材料 | 第12-15页 |
1.1.1 实验材料来源与知情同意 | 第12页 |
1.1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
1.1.3 主要仪器和物品 | 第13-14页 |
1.1.4 主要液体的配制 | 第14-15页 |
1.2 实验方法 | 第15-20页 |
1.2.1 人BMSCs的分离培养 | 第15-16页 |
1.2.2 人BMSCs的培养及传代 | 第16页 |
1.2.3 人BMSCs的生长曲线绘制 | 第16-17页 |
1.2.4 人BMSCs的冻存与复苏 | 第17页 |
1.2.5 人BMSCs形态学观察 | 第17页 |
1.2.6 流式细胞仪人BMSCs表型鉴定 | 第17-18页 |
1.2.7 人BMSCs成软骨诱导分化 | 第18-19页 |
1.2.8 人BMSCs成软骨诱导分化后染色 | 第19-20页 |
1.3 结果 | 第20-26页 |
1.3.1 人BMSCs的分离培养 | 第20-21页 |
1.3.2 人BMSCs的培养及传代 | 第21-22页 |
1.3.3 人BMSCs的生长曲线绘制 | 第22-23页 |
1.3.4 流式细胞仪人BMSCs表型鉴定 | 第23-25页 |
1.3.5 人BMSCs成软骨诱导分化后染色 | 第25-26页 |
1.4 讨论 | 第26-29页 |
1.4.1 种子细胞的选择 | 第26页 |
1.4.2 细胞培养方法的选择与改良 | 第26-27页 |
1.4.3 年龄对细胞的影响 | 第27页 |
1.4.4 种子细胞的鉴定 | 第27-28页 |
1.4.5 成软骨诱导方法 | 第28-29页 |
1.5 结论 | 第29-30页 |
第二章 人BMSCs体外复合DBM构建组织工程软骨 | 第30-45页 |
2.1 实验材料 | 第30-32页 |
2.1.1 主要试剂 | 第30页 |
2.1.2 主要仪器和物品 | 第30-31页 |
2.1.3 主要液体的配制 | 第31-32页 |
2.2 实验方法 | 第32-35页 |
2.2.1 DBM的制作过程 | 第32页 |
2.2.2 DBM的降解率测定 | 第32页 |
2.2.3 人BMSCs体外复合DBM制作细胞支架复合物 | 第32-33页 |
2.2.4 细胞支架复合物的分组 | 第33页 |
2.2.5 细胞支架复合物电镜扫描 | 第33页 |
2.2.6 细胞支架复合物组织学染色 | 第33-35页 |
2.2.7 统计学处理 | 第35页 |
2.3 结果 | 第35-42页 |
2.3.1 DBM的大体观察情况 | 第35页 |
2.3.2 DBM降解率测定 | 第35-36页 |
2.3.3 细胞支架复合物的扫描电镜观察情况 | 第36-37页 |
2.3.4 标本病理组织学检测 | 第37-41页 |
2.3.5 统计学分析结果 | 第41-42页 |
2.4 讨论 | 第42-44页 |
2.4.1 人BMSCs体外复合DBM的成软骨诱导基础 | 第42-43页 |
2.4.2 不同时相点两组成软骨差异性表达的探讨 | 第43-44页 |
2.5 结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-52页 |
综述 | 第52-61页 |
参考文献 | 第57-61页 |
附录 | 第61-63页 |
攻读学位期间主要的研究成果目录 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |