摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略语 | 第12-17页 |
第一部分 Rcn2对动脉损伤后内膜增生的影响 | 第17-36页 |
1 前言 | 第17-18页 |
2 材料和方法 | 第18-24页 |
2.1 实验材料 | 第18-20页 |
2.1.1 主要设备及试剂 | 第18-20页 |
2.1.2 研究对象 | 第20页 |
2.2 研究方法 | 第20-24页 |
2.2.1 动物分组 | 第20-21页 |
2.2.3 小鼠颈动脉结扎损伤模型的建立 | 第21页 |
2.2.4 小鼠颈总动脉取材 | 第21页 |
2.2.5 HE染色 | 第21-22页 |
2.2.6 病理形态学分析 | 第22页 |
2.2.7 免疫组化染色 | 第22-23页 |
2.2.8 ElISA检测血清促炎因子浓度及血脂 | 第23-24页 |
2.2.9 统计学分析 | 第24页 |
3 结果 | 第24-31页 |
3.1 高脂饮食加剧C57Apoe-/-小鼠血脂升高 | 第24页 |
3.2 高血脂促进C57Apoe-/-小鼠颈动脉损伤后内膜增生 | 第24-28页 |
3.3 Rcn2在高脂饮食条件下增生内膜中表达增高 | 第28页 |
3.4 Rcn2在高脂饮食条件下血浆中的浓度升高 | 第28-29页 |
3.5 Rcn2敲除抑制高脂饮食诱发的高血脂 | 第29页 |
3.6 Rcn2敲除抑制C57Apoe-/-小鼠颈动脉损伤后内膜增生 | 第29-30页 |
3.7 Rcn2敲除抑制血清MCP-1、VCAM-1水平升高 | 第30-31页 |
4 讨论 | 第31-35页 |
5 结论 | 第35-36页 |
第二部分 Rcn2对血管平滑肌细胞增殖、迁移功能的影响 | 第36-49页 |
1 前言 | 第36-37页 |
2 材料和方法 | 第37-42页 |
2.1 实验材料及仪器 | 第37-39页 |
2.1.1 实验动物 | 第37页 |
2.1.2 主要仪器及试剂 | 第37-39页 |
2.2 实验方法 | 第39-42页 |
2.2.1 小鼠主动脉血管平滑肌细胞的培养及鉴定 | 第39-40页 |
2.2.2 用不同浓度ox-LDL刺激血管平滑肌细胞 | 第40页 |
2.2.3 血管平滑肌细胞的siRNA转染 | 第40-41页 |
2.2.4 划痕试验检测血管平滑肌细胞的迁移能力 | 第41页 |
2.2.5 MTT检测血管平滑肌细胞的增殖能力 | 第41页 |
2.2.6 ELISA法检测细胞上清液中MCP-1及VCAM-1的含量 | 第41-42页 |
2.2.7 统计学分析 | 第42页 |
3 结果 | 第42-46页 |
3.1 不同浓度的ox-LDL刺激血管平滑肌细胞对Rcn2表达的影响 | 第42-43页 |
3.2 验证siRNA的干扰Rcn2表达情况 | 第43-44页 |
3.3 沉默Rcn2对血管平滑及细胞增殖活性的影响 | 第44页 |
3.4 沉默Rcn2对血管平滑及细胞迁移能力的影响 | 第44-45页 |
3.5 沉默Rcn2抑制血管平滑肌细胞促炎因子的分泌 | 第45-46页 |
4 讨论 | 第46-48页 |
5 结论 | 第48-49页 |
第三部分 Rcn2与股腘动脉慢性完全闭塞支架再狭窄的相关性研究 | 第49-63页 |
1 前言 | 第49-50页 |
2 材料和方法 | 第50-52页 |
2.1 研究对象 | 第50页 |
2.2 研究方法 | 第50-52页 |
2.2.1 一般信息收集 | 第50页 |
2.2.2 实验室检查 | 第50-51页 |
2.2.3 ELISA检测血浆Rcn2水平 | 第51页 |
2.2.4 踝肱指数(ABI) | 第51页 |
2.2.5 围手术期治疗及随访 | 第51-52页 |
2.2.6 统计方法 | 第52页 |
3 结果 | 第52-58页 |
3.1 NLR与再狭窄的关系 | 第52-56页 |
3.2 Rcn2与再狭窄的关系 | 第56-58页 |
4 讨论 | 第58-62页 |
5 结论 | 第62-63页 |
本研究创新性的自我评价 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-77页 |
综述 | 第77-101页 |
参考文献 | 第89-101页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第101-102页 |
致谢 | 第102-104页 |
个人简历 | 第104页 |