缩略词对照表 | 第5-10页 |
中文摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-14页 |
1 前言 | 第15-28页 |
1.1 国内外研究进展 | 第15-27页 |
1.1.1 植物MYB转录因子简介 | 第15-16页 |
1.1.2 植物R2R3MYB转录因子功能研究进展 | 第16-19页 |
1.1.3 植物抗旱相关研究进展 | 第19-21页 |
1.1.4 植物花粉发育相关研究进展 | 第21-25页 |
1.1.5 番茄R2R3MYB转录因子的研究现状 | 第25-26页 |
1.1.6 转录组及其应用现状 | 第26-27页 |
1.2 研究目的及意义 | 第27-28页 |
2 试验材料与方法 | 第28-43页 |
2.1 试验材料 | 第28-29页 |
2.1.1 植物材料 | 第28页 |
2.1.2 菌株及质粒载体 | 第28页 |
2.1.3 酶及生化试剂 | 第28页 |
2.1.4 PCR引物 | 第28-29页 |
2.1.5 番茄组织培养培养基 | 第29页 |
2.2 试验方法 | 第29-43页 |
2.2.1 番茄R2R3MYB转录因子家族生物信息学分析 | 第29-30页 |
2.2.2 番茄非生物胁迫处理及组织取样 | 第30-31页 |
2.2.3 基因克隆和载体构建 | 第31-35页 |
2.2.4 番茄遗传转化及转基因植株的PCR验证 | 第35-37页 |
2.2.5 荧光定量PCR分析 | 第37页 |
2.2.6 花粉体内萌发试验 | 第37-38页 |
2.2.7 花药半薄切片 | 第38页 |
2.2.8 酵母杂交试验 | 第38-41页 |
2.2.9 转录组分析差异表达基因 | 第41-43页 |
3 结果与分析 | 第43-88页 |
3.1 番茄基因组中R2R3MYB基因的生物信息学分析 | 第43-55页 |
3.1.1 番茄基因组中R2R3MYB转录因子家族成员的鉴定 | 第43-46页 |
3.1.2 番茄R2R3MYB转录因子N端蛋白保守域分析 | 第46-47页 |
3.1.3 番茄R2R3MYB基因进化关系分析 | 第47-48页 |
3.1.4 番茄R2R3MYB基因结构分析 | 第48-54页 |
3.1.5 番茄R2R3MYB转录因子基因的染色体定位 | 第54-55页 |
3.2 番茄R2R3MYB转录因子基因表达分析 | 第55-59页 |
3.2.1 番茄R2R3MYB基因非生物胁迫响应分析 | 第55-57页 |
3.2.2 番茄R2R3MYB基因组织表达特异性分析 | 第57-59页 |
3.3 番茄SlMYB41基因的克隆及功能分析 | 第59-74页 |
3.3.1 番茄SlMYB41基因的克隆及过表达载体的构建 | 第59-60页 |
3.3.2 番茄SlMYB41基因的遗传转化及转基因验证 | 第60-61页 |
3.3.3 SlMYB41过表达植株表型分析 | 第61-64页 |
3.3.4 SlMYB41过表达株系的转录组分析 | 第64-69页 |
3.3.5 SlMYB41基因能提高番茄的抗旱能力 | 第69-71页 |
3.3.6 SlMYB41酵母单杂交筛库及互作验证 | 第71-72页 |
3.3.7 SlMYB41酵母双杂交自激活验证 | 第72-74页 |
3.4 番茄SlMYB64调控营养生长及花粉发育的功能研究 | 第74-88页 |
3.4.1 番茄SlMYB64基因可能进化出新功能 | 第74-75页 |
3.4.2 番茄SlMYB64负调控番茄的营养生长 | 第75-78页 |
3.4.3 SlMYB64只影响番茄的雄性育性 | 第78-79页 |
3.4.4 SlMYB64影响番茄花药的发育 | 第79-80页 |
3.4.5 SlMYB64在花药中的表达分析 | 第80页 |
3.4.6 SlMYB64在花药中的转录组分析 | 第80-84页 |
3.4.7 SlMYB64与SlDYT1在花药中的转录组比较分析 | 第84-86页 |
3.4.8 SlMYB64与SlDYT1酵母双杂交验证不互作 | 第86-88页 |
4 讨论 | 第88-92页 |
4.1 番茄R2R3MYB转录因子家族的生物信息学及表达分析 | 第88页 |
4.2 SlMYB41提高番茄抗旱性的分子机制 | 第88-89页 |
4.3 SlMYB64是番茄花药发育的一个重要调控因子 | 第89-92页 |
5 结论 | 第92-93页 |
6 参考文献 | 第93-107页 |
7 附录 | 第107-113页 |
8 致谢 | 第113-114页 |
9 攻读学位期间发表论文情况 | 第114页 |