摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第1章 引言 | 第12-15页 |
第2章 材料与方法 | 第15-29页 |
2.1 材料 | 第15-21页 |
2.1.1 实验动物 | 第15页 |
2.1.2 主要试剂 | 第15-17页 |
2.1.3 主要仪器 | 第17页 |
2.1.4 溶液配制 | 第17-21页 |
2.2 方法 | 第21-29页 |
2.2.1 原代卫星胶质细胞的培养 | 第21页 |
2.2.2 细胞处理以及实验动物分组 | 第21页 |
2.2.3 建立慢性神经病理性疼痛模型 | 第21-22页 |
2.2.4 灌胃给药 | 第22页 |
2.2.5 神经病理痛大鼠行为学检测 | 第22页 |
2.2.6 原位杂交 | 第22-23页 |
2.2.7 逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第23-24页 |
2.2.8 免疫组织化学染色方法 | 第24-25页 |
2.2.9 细胞免疫荧光双标 | 第25页 |
2.2.10 免疫组织荧光双标 | 第25-26页 |
2.2.11 蛋白印迹(Western Blot) | 第26-27页 |
2.2.12 酶联免疫吸附实验(Elisa)检测方法 | 第27-28页 |
2.2.13 统计学方法 | 第28-29页 |
第3章 结果 | 第29-47页 |
3.1 行为学结果 | 第29-30页 |
3.1.1 机械缩足反射阈值(MWT)测定结果 | 第29-30页 |
3.1.2 热缩足反射潜伏期(TWL)测定结果 | 第30页 |
3.2 原位杂交 | 第30-32页 |
3.2.1 P2X_3原位杂交 | 第30-31页 |
3.2.2 P2X_7原位杂交 | 第31-32页 |
3.3 RT-PCR | 第32-35页 |
3.3.1 P2X_3RT-PCR | 第32-34页 |
3.3.2 P2X_7RT-PCR | 第34-35页 |
3.4 免疫组织化学 | 第35-36页 |
3.4.1 P2X_3免疫组化 | 第35页 |
3.4.2 P2X_7免疫组化 | 第35-36页 |
3.5 免疫荧光 | 第36-39页 |
3.5.1 P2X_7免疫细胞化学 | 第36-37页 |
3.5.2 P2X_7免疫组织荧光双标 | 第37-38页 |
3.5.3 P2X_3免疫组织荧光双标 | 第38-39页 |
3.6 蛋白印迹 | 第39-45页 |
3.6.1 P2X_3蛋白印迹 | 第39-40页 |
3.6.2 P2X_7蛋白印迹 | 第40-41页 |
3.6.3 ERK1/2 蛋白印迹 | 第41-43页 |
3.6.4 p38 MAPK 蛋白印迹 | 第43-45页 |
3.7 Elisa | 第45-47页 |
第4章 讨论 | 第47-50页 |
第5章 结论 | 第50-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第57-58页 |
综述 | 第58-68页 |
参考文献 | 第65-68页 |
附件 | 第68页 |