扁玉螺多糖的提取分离及结构分析
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第13-34页 |
| 1 多糖的研究概况及其应用 | 第13-17页 |
| 1.1 多糖的抗肿瘤活性研究 | 第14-15页 |
| 1.2 多糖的抗病毒活性研究 | 第15-16页 |
| 1.3 多糖对于机体免疫调节 | 第16页 |
| 1.4 多糖的抗凝血活性 | 第16-17页 |
| 1.5 多糖作为药物载体的应用 | 第17页 |
| 2 多糖的提取与分离纯化 | 第17-22页 |
| 2.1 多糖的提取 | 第17-19页 |
| 2.1.1 水提多糖 | 第18页 |
| 2.1.2 蛋白酶提取多糖 | 第18-19页 |
| 2.1.3 碱提多糖 | 第19页 |
| 2.1.4 酸提多糖 | 第19页 |
| 2.2 多糖的分离纯化 | 第19-22页 |
| 2.2.1 分级沉淀法 | 第20页 |
| 2.2.2 膜分离法 | 第20页 |
| 2.2.3 凝胶过滤层析 | 第20-21页 |
| 2.2.4 离子交换色谱层析 | 第21-22页 |
| 3 多糖的结构研究 | 第22-27页 |
| 3.1 多糖基本理化性质 | 第22页 |
| 3.2 单糖组成测定 | 第22-23页 |
| 3.3 多糖相对分子质量测定 | 第23-24页 |
| 3.4 糖链结构分析方法 | 第24-27页 |
| 3.4.1 甲基化反应 | 第24页 |
| 3.4.2 红外光谱分析 | 第24-25页 |
| 3.4.3 质谱分析 | 第25-26页 |
| 3.4.4 核磁共振技术 | 第26-27页 |
| 4 贝类动物多糖的研究概况 | 第27-30页 |
| 4.1 抗肿瘤活性 | 第27页 |
| 4.2 抗病毒活性 | 第27-28页 |
| 4.3 免疫调节活性 | 第28-29页 |
| 4.4 抗氧化活性 | 第29页 |
| 4.5 抗凝血活性 | 第29页 |
| 4.6 保湿性研究 | 第29-30页 |
| 5 扁玉螺与扁玉螺多糖的研究 | 第30-32页 |
| 5.1 形态与生态特征 | 第30-31页 |
| 5.2 扁玉螺的分布及性状鉴别 | 第31页 |
| 5.3 扁玉螺的生长繁殖 | 第31页 |
| 5.4 扁玉螺的生物活性 | 第31-32页 |
| 6 本课题的立体背景和研究思路 | 第32-34页 |
| 第一章 扁玉螺多糖的提取分离和理化性质研究 | 第34-56页 |
| 1 材料和仪器 | 第34-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-43页 |
| 2.1 样品前处理 | 第35页 |
| 2.2 扁玉螺脱脂 | 第35页 |
| 2.3 60℃热水提取扁玉螺多糖 | 第35页 |
| 2.4 碱提扁玉螺多糖 | 第35-36页 |
| 2.5 酶法脱蛋白 | 第36页 |
| 2.6 扁玉螺粗多糖基本理化性质测定 | 第36-40页 |
| 2.6.1 总糖含量测定 | 第36-37页 |
| 2.6.2 蛋白含量测定 | 第37-38页 |
| 2.6.3 糖醛酸含量测定 | 第38-39页 |
| 2.6.4 氨基糖含量测定 | 第39页 |
| 2.6.5 硫酸根含量测定 | 第39-40页 |
| 2.7 多糖样品的重均相对分子质量测定 | 第40-41页 |
| 2.7.1 色谱条件 | 第40页 |
| 2.7.2 标准曲线的制作 | 第40-41页 |
| 2.7.3 样品的相对分子质量测定 | 第41页 |
| 2.8 单糖组成的测定 | 第41-43页 |
| 2.8.1 制备溶液 | 第41页 |
| 2.8.2 样品的全水解 | 第41-42页 |
| 2.8.3 单糖标准品溶液制备 | 第42页 |
| 2.8.4 样品及标准品的衍生 | 第42页 |
| 2.8.5 色谱条件 | 第42页 |
| 2.8.6 样品的单糖测定 | 第42-43页 |
| 3 实验结果 | 第43-54页 |
| 3.1 扁玉螺粗多糖提取原料的前处理结果 | 第43页 |
| 3.2 扁玉螺脱脂处理结果 | 第43页 |
| 3.3 扁玉螺粗多糖提取结果 | 第43-45页 |
| 3.3.1 水提取扁玉螺多糖 | 第43-44页 |
| 3.3.2 碱提扁玉螺多糖 | 第44页 |
| 3.3.3 酶法脱蛋白 | 第44-45页 |
| 3.4 扁玉螺粗多糖理化性质测定结果 | 第45-50页 |
| 3.4.1 扁玉螺粗多糖总糖含量 | 第45-46页 |
| 3.4.2 蛋白含量测定结果 | 第46-47页 |
| 3.4.3 糖醛酸含量测定结果 | 第47-49页 |
| 3.4.4 氨基糖含量测定结果 | 第49页 |
| 3.4.5 硫酸根含量测定结果 | 第49-50页 |
| 3.5 相对分子质量范围测定结果 | 第50-52页 |
| 3.6 单糖组成测定结果 | 第52-54页 |
| 4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第二章 扁玉螺多糖的分离纯化和结构解析 | 第56-85页 |
| 1 材料和仪器 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-60页 |
| 2.1 DEAE弱阴离子交换层析 | 第57页 |
| 2.2 S300凝胶柱层析 | 第57-58页 |
| 2.3 重均相对分子质量的测定 | 第58页 |
| 2.4 单糖组成测定 | 第58页 |
| 2.5 红外光谱分析（IR） | 第58页 |
| 2.6 α-1,4淀粉酶水解样品以及TLC检测 | 第58页 |
| 2.7 甲基化分析 | 第58-59页 |
| 2.8 电喷雾质谱分析 | 第59-60页 |
| 2.9 核磁共振分析 | 第60页 |
| 3 实验结果 | 第60-84页 |
| 3.1 DEAE 弱阴离子交换层析 | 第60-62页 |
| 3.2 S300凝胶柱层析 | 第62-64页 |
| 3.3 重均相对分子质量的测定 | 第64-66页 |
| 3.4 单糖组成的测定 | 第66-68页 |
| 3.5 红外光谱分析结果 | 第68-69页 |
| 3.6 α-1,4淀粉酶水解样品以及TLC检测 | 第69-70页 |
| 3.7 甲基化结果 | 第70-74页 |
| 3.8 电喷雾质谱分析 | 第74-76页 |
| 3.9 核磁共振分析 | 第76-84页 |
| 4 本章小结 | 第84-85页 |
| 第三章 扁玉螺多糖抗氧化活性的研究 | 第85-94页 |
| 1 材料与仪器 | 第85-86页 |
| 1.1 实验材料 | 第85页 |
| 1.2 实验试剂 | 第85-86页 |
| 1.3 实验仪器 | 第86页 |
| 2 实验方法 | 第86-89页 |
| 2.1 DPPH自由基清除能力测定 | 第86页 |
| 2.2 羟基自由基清除能力测定 | 第86-87页 |
| 2.3 还原力测定 | 第87-88页 |
| 2.4 Fe~(2+)螯合活性测定 | 第88-89页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第89-93页 |
| 3.1 DPPH自由基清除能力 | 第89-90页 |
| 3.2 羟基自由基清除能力 | 第90-91页 |
| 3.3 还原力测定 | 第91-92页 |
| 3.4 Fe~(2+)螯合活性 | 第92-93页 |
| 4 本章小结 | 第93-94页 |
| 结语 | 第94-96页 |
| 创新点 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 个人简历 | 第106页 |
| 发表的学术论文 | 第106-107页 |
