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纤维素发酵制备生物乙醇管式膜集成技术研究

学位论文的主要创新点第3-4页
摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
第一章 绪论第10-26页
    1.1 课题选择背景第10-11页
    1.2 国际上生物乙醇发展现状第11-12页
    1.3 我国的生物乙醇发展现状第12页
    1.4 纤维素制备生物乙醇的研究进展第12-21页
        1.4.1 发酵原料的来源第13页
        1.4.2 木质纤维素的组成及发酵途径第13-15页
        1.4.3 木质纤维素的预处理技术第15-16页
            1.4.3.1 物理法第15-16页
            1.4.3.2 化学法第16页
            1.4.3.3 生物法第16页
        1.4.4 纤维素糖化工艺第16-18页
            1.4.4.1 酸法糖化第17页
            1.4.4.2 酶法糖化第17-18页
        1.4.5 发酵工艺第18-21页
            1.4.5.1 发酵微生物第19页
            1.4.5.2 发酵方式第19-21页
    1.5 膜分离技术概况第21-23页
        1.5.1 膜分离的概念第21页
        1.5.2 膜分离技术的特点第21页
        1.5.5 管式膜应用概况第21-23页
            1.5.5.1 管式膜简介第22页
            1.5.5.2 管式膜应用第22-23页
    1.6 课题研究意义及内容第23-26页
第二章 纤维素酶解条件的研究第26-36页
    2.1 引言第26页
    2.2 实验部分第26-27页
        2.2.1 实验材料与仪器第26-27页
        2.2.2 纤维素糖化条件及优化第27页
        2.2.3 重复性实验第27页
    2.3 分析与测试方法第27-31页
        2.3.1 纤维素含量的测定第28页
            2.3.1.1 酸性洗涤剂配制第28页
            2.3.1.2 酸性洗涤纤维的测定第28页
        2.3.2 纤维素酶活力的测定第28-29页
        2.3.3 还原糖含量的测定第29-31页
            2.3.3.1 配置DNS显色剂第29页
            2.3.3.2 配制葡萄糖标准溶液第29页
            2.3.3.3 最适波长的测定第29-30页
            2.3.3.4 标准曲线的绘制第30-31页
            2.3.3.5 含量的测定第31页
    2.4 结果与讨论第31-34页
        2.4.1 正交实验第31-33页
        2.4.2 重复性实验第33-34页
    2.5 本章小结第34-36页
第三章 乙醇发酵条件的研究第36-46页
    3.1 引言第36页
    3.2 实验原料与仪器第36-37页
    3.3 实验方法第37-38页
        3.3.1 酵母复水活化第37页
        3.3.2 乙醇含量的测定第37-38页
            3.3.2.1 AR显色剂及乙醇标准溶液的配制第37页
            3.3.2.2 乙醇最适波长的测定第37-38页
            3.3.2.3 乙醇标准曲线绘制第38页
            3.3.2.4 乙醇含量的测定第38页
        3.3.3 乙醇发酵条件的优化及优化条件下的正交实验第38页
    3.4 结果与讨论第38-44页
        3.4.1 乙醇最大吸收波长第39页
        3.4.2 乙醇标准曲线第39-40页
        3.4.3 单因素实验第40-43页
            3.4.3.1 发酵时间对葡萄糖发酵的影响第40-41页
            3.4.3.2 接种量对葡萄糖发酵的影响第41-42页
            3.4.3.3 pH值对葡萄糖发酵的影响第42页
            3.4.3.4 温度对葡萄糖发酵的影响第42-43页
        3.4.4 正交实验第43-44页
    3.5 本章小结第44-46页
第四章 管式超滤膜集成技术的研究第46-54页
    4.1 引言第46页
    4.2 实验原料与仪器第46-47页
    4.3 实验方法第47-49页
        4.3.1 管式膜性能测定第47-48页
            4.3.1.1 膜的SEM扫描第47页
            4.3.1.2 膜通量及对卵清蛋白的截留率的测定第47-48页
        4.3.2 原料对纤维素酶的吸附作用第48页
        4.3.3 纤维素酶的回收第48-49页
        4.3.4 酵母的回收第49页
            4.3.4.1 酶解糖液的浓缩第49页
            4.3.4.2 发酵酵母回收第49页
    4.4 结果与讨论第49-52页
        4.4.1 管式膜的性能表征第49-50页
            4.4.1.1 膜内表面形貌第49-50页
            4.4.1.2 膜通量及蛋白截留第50页
        4.4.2 纤维素酶的回收第50-51页
        4.4.3 酵母的回收利用第51-52页
            4.4.3.1 酶解糖液的浓缩第51页
            4.4.3.2 酵母的回收第51-52页
    4.5 本章小结第52-54页
第五章 结论与展望第54-56页
    5.1 结论第54-55页
    5.2 展望第55-56页
参考文献第56-62页
发表论文和参加科研情况第62-64页
致谢第64页

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