摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
第一章 文献综述 | 第18-39页 |
1 香蕉枯萎病的发生与防治技术研究进展 | 第18-25页 |
1.1 香蕉枯萎病的发病规律 | 第18-22页 |
1.1.1 发生现状 | 第18-19页 |
1.1.2 病原菌的生物学特性 | 第19-20页 |
1.1.3 发病症状与传播因素 | 第20-22页 |
1.2 香蕉枯萎病防治技术 | 第22-25页 |
1.2.1 抗病育种 | 第22页 |
1.2.2 检验检疫 | 第22-23页 |
1.2.3 栽培管理 | 第23页 |
1.2.4 化学防治 | 第23页 |
1.2.5 生物防治 | 第23-25页 |
2 生防芽胞杆菌研究进展 | 第25-28页 |
2.1 应用情况 | 第25页 |
2.2 作用机理 | 第25-28页 |
2.2.1 竞争作用 | 第25-26页 |
2.2.2 拮抗作用 | 第26-27页 |
2.2.3 溶菌作用 | 第27页 |
2.2.4 诱导抗性 | 第27页 |
2.2.5 促生作用 | 第27-28页 |
3 脂肽抗生素研究进展 | 第28-32页 |
3.1 产生脂肽抗生素的菌株 | 第28页 |
3.2 种类 | 第28-29页 |
3.2.1 表面活性素(Surfactin) | 第28-29页 |
3.3.2 芬芥素(Fengycin) | 第29页 |
3.2.3 伊枯草菌素(Iturin) | 第29页 |
3.3 合成机制 | 第29-30页 |
3.4 应用领域 | 第30页 |
3.5 分离和鉴定 | 第30-32页 |
3.5.1 分离纯化 | 第30-31页 |
3.5.2 质谱技术在鉴定中的应用 | 第31-32页 |
4 微生物土壤定殖检测方法研究进展 | 第32-36页 |
4.1 抗生素标记 | 第33页 |
4.2 基因标记 | 第33页 |
4.3 DNA和RNA探针技术 | 第33-34页 |
4.4 免疫学方法 | 第34页 |
4.5 绿色荧光蛋白(GFP)在土壤微生态学领域的应用 | 第34-36页 |
4.5.1 GFP的特点 | 第34-35页 |
4.5.2 GFP在微生物定殖研究中的应用 | 第35-36页 |
5 抗土传病害生物有机肥研究概况 | 第36-37页 |
5.1 生物有机肥的概念 | 第36页 |
5.2 生物有机肥的分类 | 第36页 |
5.2.1 根据含微生物的种类和性能分类 | 第36页 |
5.2.2 根据形态和基质分类 | 第36页 |
5.3 生物有机肥在防控土传病害中的应用 | 第36-37页 |
6 本研究背景、目的与意义 | 第37-38页 |
7 技术路线 | 第38-39页 |
第二章 香蕉枯萎病生防芽胞杆菌营养适应性的评价 | 第39-59页 |
1 材料与方法 | 第39-45页 |
1.1 材料 | 第39-41页 |
1.1.1 菌株 | 第39页 |
1.1.2 土壤 | 第39页 |
1.1.3 试剂 | 第39-40页 |
1.1.4 培养基 | 第40-41页 |
1.2 制备FOC孢子悬浮液 | 第41页 |
1.3 芽胞杆菌的营养适应性评价 | 第41-43页 |
1.3.1 制备待测芽胞杆菌菌悬液 | 第41页 |
1.3.2 芽胞杆菌菌株在不同营养培养基上的抑菌作用 | 第41页 |
1.3.3 营养与芽胞杆菌组合对土壤中FOC的抑制作用 | 第41-43页 |
1.4 菌株HWC-2的鉴定 | 第43-44页 |
1.4.1 培养特征及生理生化鉴定 | 第43页 |
1.4.2 16S rDNA序列分析鉴定 | 第43-44页 |
1.5 菌株HWC-2生长条件优化 | 第44-45页 |
1.5.1 碳源和氮源的优化 | 第44页 |
1.5.2 无机盐的优化 | 第44-45页 |
1.5.3 培养条件的优化 | 第45页 |
1.7 数据处理 | 第45页 |
2 结果与分析 | 第45-57页 |
2.1 芽胞杆菌菌株在不同营养培养基上的抑菌特性 | 第45-49页 |
2.2 不同营养和芽胞杆菌组合对土壤中FOC的抑制作用 | 第49-52页 |
2.2.1 对FOC数量的影响 | 第49-50页 |
2.2.2 对芽胞杆菌定殖的影响 | 第50-51页 |
2.2.3 土壤提取液对FOC的抑制作用 | 第51-52页 |
2.3 菌株HWC-2的鉴定 | 第52-54页 |
2.3.1 培养特性和生理生化特性 | 第52-53页 |
2.3.2 16S rDNA的测定与序列分析 | 第53-54页 |
2.4 菌株HWC-2生长条件优化 | 第54-57页 |
2.4.1 碳源种类及浓度的影响 | 第54-55页 |
2.4.2 氮源种类及浓度的影响 | 第55页 |
2.4.3 无机盐浓度的影响 | 第55-56页 |
2.4.4 培养条件的影响 | 第56-57页 |
3 讨论 | 第57-58页 |
4 本章小结 | 第58-59页 |
第三章 菌株HWC-2的活性物质分析 | 第59-78页 |
1 材料与方法 | 第59-63页 |
1.1 材料 | 第59-60页 |
1.1.1 菌株 | 第59页 |
1.1.2 培养基 | 第59-60页 |
1.1.3 试剂 | 第60页 |
1.1.4 仪器 | 第60页 |
1.2 方法 | 第60-63页 |
1.2.1 脂肽合成基因的检测 | 第60页 |
1.2.2 制备无菌滤液 | 第60-61页 |
1.2.3 活性粗提物质的特性 | 第61页 |
1.2.4 菌株HWC-2产活性物质(脂肽)条件的优化 | 第61页 |
1.2.4.1 单因子优化 | 第61页 |
1.2.4.2 正交优化 | 第61页 |
1.2.5 脂肽类抑菌物质的鉴定 | 第61-62页 |
1.2.5.1 HPLC分离 | 第61-62页 |
1.2.5.2 HPLC-ESI-MS鉴定 | 第62页 |
1.2.6 HPLC分离组分特性 | 第62-63页 |
1.2.6.1 脂肽类物质的抑菌活性测定 | 第62页 |
1.2.6.2 脂肽类物质对几种病原镰刀菌抑菌谱 | 第62-63页 |
1.2.6.3 HPLC分离组分特性 | 第63页 |
2 结果与分析 | 第63-76页 |
2.1 脂肽抗生素相关基因检测 | 第63-64页 |
2.1.1 PCR扩增结果与序列分析 | 第63页 |
2.1.2 测序结果分析 | 第63-64页 |
2.2 粗提物的特性 | 第64页 |
2.3 抗菌脂肽类物质产生的发酵因子优化 | 第64-66页 |
2.3.1 单因子优化 | 第64-65页 |
2.3.2 正交优化 | 第65-66页 |
2.4 脂肽类物质的鉴定 | 第66-76页 |
2.4.1 HPLC分离组分的活性检测 | 第66-68页 |
2.4.2 活性粗提物质HPLC-ESI-MS检测 | 第68-73页 |
2.4.3 脂肽抗生素的粗定量分析 | 第73-74页 |
2.4.4 脂肽类物质对FOC的抑制作用 | 第74页 |
2.4.5 脂肽类物质对几种病原菌的抗菌谱 | 第74-75页 |
2.4.6 抗菌物质室温下对紫外线的稳定性和自然降解情况 | 第75-76页 |
3 讨论 | 第76-77页 |
4 本章小结 | 第77-78页 |
第四章 解淀粉芽胞杆菌HWC-2的GFP标记和土壤定殖因素研究 | 第78-92页 |
1 材料与方法 | 第78-81页 |
1.1 材料 | 第78-79页 |
1.1.1 菌株与质粒 | 第78页 |
1.1.2 培养基 | 第78-79页 |
1.1.3 肥料 | 第79页 |
1.1.4 土壤 | 第79页 |
1.2 菌株HWC-2的GFP标记 | 第79-80页 |
1.2.1 化学转化 | 第79页 |
1.2.2 转化子的荧光检测 | 第79-80页 |
1.2.3 标记菌株的遗传稳定性测定 | 第80页 |
1.2.4 生长曲线检测 | 第80页 |
1.2.5 标记菌株抑菌活性检测 | 第80页 |
1.3 土壤因素对FOC和HWC-2-GFP数量的影响 | 第80-81页 |
1.3.1 土壤质地的影响 | 第80页 |
1.3.2 土壤温度的影响 | 第80页 |
1.3.3 土壤湿度的影响 | 第80-81页 |
1.3.4 作物的影响 | 第81页 |
1.3.5 土壤营养的影响 | 第81页 |
1.4 数据分析 | 第81页 |
2 结果分析 | 第81-90页 |
2.1 菌株HWC-2的GFP标记 | 第81-82页 |
2.2 稳定性检测 | 第82页 |
2.3 标记菌株与原始菌株的生长曲线 | 第82-83页 |
2.4 标记菌株抑菌活性检测 | 第83页 |
2.5 土壤因素对FOC和HWC-2-GFP数量的影响 | 第83-90页 |
2.5.1 土壤质地的影响 | 第83-85页 |
2.5.2 土壤温度的影响 | 第85-86页 |
2.5.3 土壤湿度的影响 | 第86-87页 |
2.5.4 作物的影响 | 第87-88页 |
2.5.5 添加营养的影响 | 第88-90页 |
3 讨论 | 第90-91页 |
4 本章小结 | 第91-92页 |
第五章 复合HE菌肥配方的优化 | 第92-101页 |
1 材料与方法 | 第92-95页 |
1.1 材料 | 第92-93页 |
1.1.1 菌株 | 第92-93页 |
1.1.2 仪器 | 第93页 |
1.1.3 病土 | 第93页 |
1.2 方法 | 第93-95页 |
1.2.1 不同菌株和OF1的组合对土壤中FOC的抑制作用 | 第93页 |
1.2.2 菌株HWC-2和E7菌粉的制备 | 第93-94页 |
1.2.3 HWC-2和E7在OF1中的存活动态 | 第94-95页 |
1.2.3.1 湿度的影响 | 第94页 |
1.2.3.2 温度的影响 | 第94-95页 |
1.3 测定指标 | 第95页 |
1.4 数据处理 | 第95页 |
2 结果分析 | 第95-99页 |
2.1 不同组合对土壤FOC的抑制效果 | 第95-96页 |
2.2 制备菌株HWC-2和E7菌粉的产率 | 第96-97页 |
2.3 湿度对菌株HWC-2和E7在有机肥OF1中存活动态的影响 | 第97-98页 |
2.3.1 菌株HWC-2和E7共同接入 | 第97页 |
2.3.2 菌株HWC-2和E7单独接入 | 第97-98页 |
2.4 温度对菌株HWC-2和E7在有机肥OF1中存活动态的影响 | 第98-99页 |
2.4.1 菌株HWC-2和E7共同接入 | 第98-99页 |
2.4.2 菌株HWC-2和E7单独接入 | 第99页 |
3 讨论 | 第99-100页 |
4 本章小结 | 第100-101页 |
第六章 套作与施用复合HE菌肥对香蕉枯萎病的控病作用 | 第101-112页 |
1 材料与方法 | 第102-103页 |
1.1 材料 | 第102页 |
1.2 试验设计 | 第102页 |
1.3 测定方法和指标 | 第102-103页 |
1.3.1 植株长势状况 | 第103页 |
1.3.2 病情指数 | 第103页 |
1.3.3 根际土壤可培养微生物数量 | 第103页 |
1.3.4 根际土壤总呼吸速率 | 第103页 |
1.4 数据分析 | 第103页 |
2 结果分析 | 第103-108页 |
2.1 不同处理对香蕉植株生长的影响 | 第103-104页 |
2.2 不同处理对香蕉枯萎病病情指数的影响 | 第104-105页 |
2.3 不同处理对香蕉根际FOC数量的影响 | 第105-106页 |
2.4 不同处理对FOC在香蕉根际土层深度分布的影响 | 第106-107页 |
2.5 不同处理对香蕉根际微生物数量的影响 | 第107页 |
2.6 不同处理对香蕉根际土壤呼吸速率的影响 | 第107-108页 |
2.7 病情指数、根际土壤微生物数量和呼吸速率的相关性分析 | 第108页 |
3 讨论 | 第108-111页 |
4 本章小结 | 第111-112页 |
第七章 复合HE菌肥防治香蕉枯萎病中的的机理初探 | 第112-124页 |
1 材料与方法 | 第112-113页 |
1.1 材料 | 第112页 |
1.2 实验设计 | 第112页 |
1.3 测定方法和指标 | 第112-113页 |
1.3.1 植株长势状况 | 第113页 |
1.3.2 病情指数 | 第113页 |
1.3.3 根际土壤微生物数量 | 第113页 |
1.3.4 根际土壤总呼吸速率 | 第113页 |
1.3.5 香蕉根际土壤抗菌脂肽 | 第113页 |
1.4 数据分析 | 第113页 |
2 结果分析 | 第113-122页 |
2.1 不同处理对香蕉生长的影响 | 第113-114页 |
2.2 不同处理对香蕉枯萎病病情指数的影响 | 第114-115页 |
2.3 不同处理对香蕉根际FOC数量的影响 | 第115页 |
2.4 不同处理对根际可培养微生物数量的影响 | 第115-116页 |
2.5 不同处理对根际土壤总呼吸速率的影响 | 第116页 |
2.6 不同处理的根际土壤中抗菌脂肽的检测 | 第116-121页 |
2.7 病情指数、根际土壤微生物数量和呼吸速率的相关性分析 | 第121-122页 |
3 讨论 | 第122-123页 |
4 本章小结 | 第123-124页 |
全文结论和创新点 | 第124-126页 |
一、全文结论 | 第124-125页 |
二、创新点 | 第125-126页 |
参考文献 | 第126-142页 |
附录 | 第142-145页 |
一、在读期间主持和参加的科研项目 | 第142页 |
二、在读期间发表的论文,获授权专利和成果 | 第142-145页 |
致谢 | 第145页 |