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PTP1B在肝纤维化形成及逆转过程中的作用研究

中英文缩略词对照第6-8页
中文摘要第8-11页
Abstract第11-13页
1 前言第14-15页
2 实验材料第15-20页
    2.1 实验动物和细胞第15页
    2.2 主要试剂第15-17页
    2.3 仪器与设备第17-18页
    2.4 主要试剂和溶液的配制第18-20页
3 实验方法第20-36页
    3.1 小鼠动物模型的建立第20页
    3.2 小鼠肝组织病理学检测第20-22页
    3.3 免疫组化第22页
    3.4 免疫荧光双染第22-23页
    3.5 血清谷丙转氨酶(ALT)含量测定(微板法)第23-24页
    3.6 血清谷草转氨酶(AST)含量测定(微板法)第24-25页
    3.7 HSC-T6细胞培养和传代第25页
    3.8 MDI诱导已活化的HSC-T6细胞失活第25页
    3.9 PTP1B-siRNA转染HSC-T6第25-26页
    3.10 pCDNA3.1 Flag-rat-PTP1B转染HSC-T6细胞第26-28页
    3.11 MTT试验第28页
    3.12 细胞周期检测(Propidium染色法)第28-29页
    3.13 细胞凋亡检测(Annexin V-FITC/PI双染法)第29-30页
    3.14 Real-time PCR实验第30-32页
    3.15 Western Blot实验第32-35页
    3.16 统计学处理第35-36页
4 结果第36-56页
    4.1 PTP1B在纤维化肝组织及逆转肝组织中的表达变化第36-41页
    4.2 PTP1B在活化的HSC-T6中的表达水平第41-44页
    4.3 PTP1B-siRNA对TGF-β1诱导的HSC-T6增殖的影响第44-47页
    4.4 PTP1B-siRNA对TGF-β1诱导的HSC-T6细胞活化的影响第47-49页
    4.5 PTP1B在MDI诱导逆转的HSC-T6中的表达变化第49-52页
    4.6 pCDNA3.1-PTP1B质粒对MDI诱导的HSC-T6失活的影响第52-56页
5 讨论第56-59页
6 结论第59-60页
参考文献第60-64页
附录第64-66页
致谢第66-67页
综述第67-98页
    References第89-98页

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