| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略语表 | 第15-16页 |
| 1 前言 | 第16-27页 |
| 1.1 立题背景 | 第16-17页 |
| 1.2 文献综述 | 第17-26页 |
| 1.2.1 肝脏的免疫功能 | 第17-22页 |
| 1.2.1.1 肝脏免疫的结构基础 | 第17-18页 |
| 1.2.1.2 肝脏免疫微环境 | 第18-20页 |
| 1.2.1.3 TLRs与肝脏免疫 | 第20-22页 |
| 1.2.2 TLR4信号通路简介 | 第22-26页 |
| 1.2.2.1 TLR4的发现 | 第22-23页 |
| 1.2.2.2 TLR4的配体 | 第23页 |
| 1.2.2.3 TLR4信号通路 | 第23-24页 |
| 1.2.2.4 TLR4信号通路与肝损伤 | 第24-25页 |
| 1.2.2.5 TLR4信号通路与肝再生 | 第25-26页 |
| 1.3 选题目的与意义 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-40页 |
| 2.1 试验动物与器材 | 第27-30页 |
| 2.1.1 试验动物及处理 | 第27页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.4 主要溶液和试剂的配制 | 第29-30页 |
| 2.2 试验方法 | 第30-40页 |
| 2.2.1 样品采集与处理 | 第30页 |
| 2.2.2 石蜡切片制作 | 第30-31页 |
| 2.2.3 苏木精-伊红（HE）染色 | 第31页 |
| 2.2.4 变色酸 2R染色 | 第31-32页 |
| 2.2.5 免疫组织化学染色 | 第32页 |
| 2.2.6 细胞凋亡检测 | 第32-33页 |
| 2.2.7 谷丙转氨酶活性检测 | 第33-34页 |
| 2.2.8 caspase-3 活性检测 | 第34-35页 |
| 2.2.9 BCA法测定组织匀浆液的蛋白浓度 | 第35-36页 |
| 2.2.10 荧光定量PCR | 第36-39页 |
| 2.2.10.1 组织样总RNA的提取 | 第36-37页 |
| 2.2.10.2 RNA逆转录合成cDNA第一条链 | 第37页 |
| 2.2.10.3 荧光定量PCR引物的合成 | 第37-38页 |
| 2.2.10.4 荧光定量PCR分析 | 第38-39页 |
| 2.2.11 数据统计分析 | 第39-40页 |
| 3 结果 | 第40-54页 |
| 3.1 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激对肝脏组织结构的影响 | 第40-42页 |
| 3.2 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝脏ALT活性的变化 | 第42-43页 |
| 3.3 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝脏炎性因子的表达变化 | 第43-45页 |
| 3.4 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激对肝细胞凋亡的影响 | 第45-48页 |
| 3.4.1 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝脏caspase-3 活性变化 | 第45页 |
| 3.4.2 LPS刺激对肝细胞凋亡的影响 | 第45-47页 |
| 3.4.3 LPS刺激或鼠伤寒沙门刺激后肝脏caspase-3 caspase-8 的表达变化 | 第47-48页 |
| 3.5 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激对肝细胞增殖的影响 | 第48-50页 |
| 3.6 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝脏TLR4信号通路相关分子的表达变化 | 第50-54页 |
| 4 讨论 | 第54-61页 |
| 4.1 LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激对肝脏组织结构及ALT活性的影响 | 第54-55页 |
| 4.2 TLR4信号通路对LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝脏炎性因子表达的影响 | 第55-58页 |
| 4.3 TLR4信号通路对LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝细胞凋亡的影响 | 第58-59页 |
| 4.4 TLR4信号通路对LPS或鼠伤寒沙门氏菌刺激后肝细胞增殖的影响 | 第59-61页 |
| 5 结论 | 第61页 |
| 6 本研究的创新之处 | 第61页 |
| 7 本研究的不足之处 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 附录1 个人简历 | 第81-82页 |
| 附录2 论文发表情况 | 第82页 |
