| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第1章 绪论 | 第15-49页 |
| 1.1 微生物共合成技术概述 | 第15-20页 |
| 1.1.1 微生物共合成类型及特点 | 第17-18页 |
| 1.1.2 PHB与Ectoine共合成 | 第18-20页 |
| 1.2 PHA及其微生物合成研究进展 | 第20-32页 |
| 1.2.1 PHA结构、性质与应用 | 第20-23页 |
| 1.2.2 PHA合成菌株 | 第23-24页 |
| 1.2.3 PHA的微生物合成途径及相关酶 | 第24-26页 |
| 1.2.4 PHA发酵的影响因素及发酵工艺 | 第26-28页 |
| 1.2.5 PHA发酵的代谢调控研究 | 第28-30页 |
| 1.2.6 PHA的提取纯化技术 | 第30-32页 |
| 1.3 Ectoine的微生物合成及提取纯化技术 | 第32-42页 |
| 1.3.1 Ectoine的结构、性质与应用 | 第32-34页 |
| 1.3.2 Ectoine的合成菌株 | 第34-35页 |
| 1.3.3 Ectoine分泌型菌株 | 第35-36页 |
| 1.3.4 Ectoine的微生物合成途径 | 第36-38页 |
| 1.3.5 Ectoine发酵的影响因素及发酵工艺 | 第38-40页 |
| 1.3.6 Ectoine发酵的代谢调控研究 | 第40-41页 |
| 1.3.7 Ectoine的提取纯化技术 | 第41-42页 |
| 1.4 PHB/Ect共合成研究概述 | 第42-46页 |
| 1.4.1 PHB/Ect共合成菌株 | 第42-44页 |
| 1.4.2 PHB/Ect共合成影响因素 | 第44-45页 |
| 1.4.3 PHB/Ect共合成发酵工艺 | 第45-46页 |
| 1.5 本文立题背景和研究内容 | 第46-49页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第49-68页 |
| 2.1 实验材料 | 第49-52页 |
| 2.1.1 菌株 | 第49页 |
| 2.1.2 分离样品 | 第49页 |
| 2.1.3 标准品 | 第49页 |
| 2.1.4 试剂盒和试剂 | 第49-50页 |
| 2.1.5 培养基 | 第50-51页 |
| 2.1.6 仪器 | 第51-52页 |
| 2.2 实验方法 | 第52-68页 |
| 2.2.1 Ectoine合成菌株的分离筛选 | 第52-53页 |
| 2.2.2 Ectoine分泌型菌株筛选鉴定 | 第53页 |
| 2.2.3 Ectoine分泌型PHB/Ect共合成菌株筛选 | 第53页 |
| 2.2.4 菌株16S rDNA分析鉴定方法 | 第53-55页 |
| 2.2.5 PHA合成酶基因克隆分析 | 第55页 |
| 2.2.6 三角瓶发酵方法 | 第55-56页 |
| 2.2.7 发酵罐发酵方法 | 第56页 |
| 2.2.8 发酵动力学模型的建立方法 | 第56-57页 |
| 2.2.9 细胞干重测定方法 | 第57页 |
| 2.2.10 Ectoine核磁共振氢谱分析方法 | 第57-58页 |
| 2.2.11 PHB ~1H-NMR分析方法 | 第58-59页 |
| 2.2.12 Ectoine浓度测定方法 | 第59-60页 |
| 2.2.13 PHB含量测定方法 | 第60-65页 |
| 2.2.14 葡萄糖浓度测定方法 | 第65页 |
| 2.2.15 谷氨酸单钠浓度测定方法 | 第65-66页 |
| 2.2.16 乙酸浓度测定方法 | 第66页 |
| 2.2.17 PHB/Ect共合成产物提取方法 | 第66-68页 |
| 第3章 PHB/Ect共合成菌株筛选鉴定 | 第68-83页 |
| 3.1 Ectoine分泌型PHB/Ect共合成菌株的分离筛选 | 第71-79页 |
| 3.1.1 Ectoine合成菌株的分离筛选 | 第71页 |
| 3.1.2 Ectoine分泌型菌株的筛选鉴定 | 第71-74页 |
| 3.1.3 16S rDNA鉴定 | 第74-76页 |
| 3.1.4 从Ectoine分泌型菌株中筛选PHB合成菌株 | 第76-77页 |
| 3.1.5 PHB/Ect共合成菌株PHB和Ectoine ~1H-NMR鉴定 | 第77-79页 |
| 3.2 H.salina DSM 5928 PHA合成酶基因克隆分析 | 第79-82页 |
| 3.3 结论 | 第82-83页 |
| 第4章 H.salina DSM 5928 PHB/Ect共合成条件优化 | 第83-91页 |
| 4.1 NaCl浓度对PHB/Ect共合成的影响 | 第84-87页 |
| 4.1.1 NaCl浓度对细胞生长的影响 | 第84页 |
| 4.1.2 NaCl浓度对Ectoine合成和分泌的影响 | 第84-85页 |
| 4.1.3 NaCl浓度对PHB合成的影响 | 第85-86页 |
| 4.1.4 NaCl浓度对PHB/Ect共合成的影响 | 第86-87页 |
| 4.2 初始C/N对PHB/Ect共合成的影响 | 第87-88页 |
| 4.3 初始磷酸盐浓度对PHB/Ect共合成的影响 | 第88-89页 |
| 4.4 结论 | 第89-91页 |
| 第5章 H.salina DSM 5928 PHB/Ect共合成代谢调控研究 | 第91-102页 |
| 5.1 添加柠檬酸钠抑制碳溢流 | 第93-97页 |
| 5.1.1 H.salina DSM 5928 PHB合成途径考查 | 第93-95页 |
| 5.1.2 高浓度葡萄糖形成碳溢流 | 第95-97页 |
| 5.1.3 柠檬酸钠添加量优化 | 第97页 |
| 5.2 限制溶氧浓度抑制乙酰CoA向TCA循环的代谢流 | 第97-98页 |
| 5.3 混合碳源调控PHB/Ect共合成代谢流 | 第98-100页 |
| 5.4 结论 | 第100-102页 |
| 第6章 PHB/Ect共合成发酵罐发酵及发酵动力学模型的建立 | 第102-113页 |
| 6.1 PHB/Ect共合成发酵罐分批发酵 | 第103-105页 |
| 6.2 H salina DSM 5928发酵动力学模型的建立 | 第105-109页 |
| 6.3 两阶段PHB/Ect共合成补料分批发酵 | 第109-111页 |
| 6.4 结论 | 第111-113页 |
| 第7章 PHB/Ect共合成产物提取 | 第113-124页 |
| 7.1 基于低渗透压冲击的PHB提取 | 第114-117页 |
| 7.2 基于低渗透压冲击的纯水相PHB/Ect共合成产物提取 | 第117-123页 |
| 7.2.1 H.salina DSM 5928 PHB/Ect共合成发酵液产物组分分析 | 第117-118页 |
| 7.2.2 基于低渗透压冲击的纯水相PHB提取研究 | 第118-123页 |
| 7.3 结论 | 第123-124页 |
| 结论 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-138页 |
| 附录 论文缩略表 | 第138-142页 |
| 攻读学位期间公开发表论文 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 作者简介 | 第144页 |
