| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-32页 |
| 1.1 分析检测的研究背景 | 第13-20页 |
| 1.1.1 疾病诊断分析检测 | 第13-17页 |
| 1.1.2 食品安全分析检测 | 第17-20页 |
| 1.2 信号放大技术 | 第20-23页 |
| 1.2.1 分析检测中的信号放大技术 | 第20-21页 |
| 1.2.2 信号放大方式 | 第21-23页 |
| 1.3 基于生物酶与纳米功能材料的信号放大技术在医学诊断及食品安全分析中的应用 | 第23-29页 |
| 1.3.1 基于生物酶的放大技术 | 第23-27页 |
| 1.3.2 基于纳米功能材料的放大技术 | 第27-29页 |
| 1.4 本论文的主要工作内容 | 第29-32页 |
| 第2章 酶标抗体信号放大用于VEGFR2免疫分析 | 第32-48页 |
| 2.1 引言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验部分 | 第33-36页 |
| 2.2.1 试剂和材料 | 第33-34页 |
| 2.2.2 仪器 | 第34页 |
| 2.2.3 壳聚糖-RGO复合纳米材料的合成 | 第34页 |
| 2.2.4 电化学VEGFR2免疫生物传感器的构建过程 | 第34页 |
| 2.2.5 电化学测量过程 | 第34-35页 |
| 2.2.6 细胞培育和测试样品制备 | 第35页 |
| 2.2.7 使用酶联免疫吸附法(ELISA)定量VEGFR2的操作步骤 | 第35页 |
| 2.2.8 VEGFR2及其抑制剂之间相互作用的分子模拟 | 第35-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-47页 |
| 2.3.1 壳聚糖-RGO复合物的表征 | 第36-37页 |
| 2.3.2 生物传感器的表征 | 第37-39页 |
| 2.3.3 条件优化 | 第39-42页 |
| 2.3.4 VEGFR2的检测 | 第42-43页 |
| 2.3.5 实验的特异性、重现性、稳定性 | 第43-44页 |
| 2.3.6 实际样品检测 | 第44-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-48页 |
| 第3章 磷钼酸探针信号放大用于生物标志物分析 | 第48-60页 |
| 3.1 引言 | 第48-50页 |
| 3.2 实验部分 | 第50-51页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第50页 |
| 3.2.2 仪器 | 第50页 |
| 3.2.3 生物传感器的修饰过程 | 第50-51页 |
| 3.2.4 测量步骤 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-59页 |
| 3.3.1 电极上修饰材料的表征 | 第51-53页 |
| 3.3.2 电化学生物传感器构建过程的表征 | 第53-54页 |
| 3.3.3 条件优化 | 第54-55页 |
| 3.3.4 基于磷钼酸的免标记电化学生物传感器的分析性能研究 | 第55-58页 |
| 3.3.5 凝血酶的实样检测 | 第58-59页 |
| 3.4 小结 | 第59-60页 |
| 第4章 传感单元聚集信号放大用于Hg~(2+)检测 | 第60-74页 |
| 4.1 引言 | 第60-61页 |
| 4.2 实验部分 | 第61-63页 |
| 4.2.1 试剂和材料 | 第61页 |
| 4.2.2 仪器和测试过程 | 第61-62页 |
| 4.2.3 Ag-T纳米探针的合成 | 第62页 |
| 4.2.4 基于Ag-T纳米探针的电化学Hg~(2+)传感器构建过程 | 第62-63页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第63-73页 |
| 4.3.1 Ag-T纳米探针的表征 | 第63-64页 |
| 4.3.2 基于Ag-T纳米探针构建的比色Hg~(2+)传感器性能研究 | 第64-67页 |
| 4.3.3 基于Ag-T纳米探针构建的增强型电化学Hg~(2+)传感器性能研究 | 第67-73页 |
| 4.4 小结 | 第73-74页 |
| 第5章 荧光分子富集的蛋白颗粒信号放大用于miRNA灵敏检测 | 第74-84页 |
| 5.1 引言 | 第74-75页 |
| 5.2 实验部分 | 第75-78页 |
| 5.2.1 试剂和材料 | 第75-76页 |
| 5.2.2 仪器 | 第76页 |
| 5.2.3 金纳米颗粒包裹的磁珠(Au-MB)的制备 | 第76-77页 |
| 5.2.4 制备抗miRNA-21偶联的Au-MB (anti-miRNA-Au-MB/A21AM) | 第77页 |
| 5.2.5 p19蛋白偶联的装载DTDI荧光分子的白蛋白纳米颗粒(p19-DTDI-AlbNPs)的制备 | 第77页 |
| 5.2.6 荧光测试 | 第77页 |
| 5.2.7 细胞培养与总RNA抽提 | 第77-78页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第78-83页 |
| 5.3.1 磁珠修饰过程的表征 | 第78页 |
| 5.3.2 装载DTDI的白蛋白纳米颗粒(DTDI-Alb NPs)及其表面偶联p19蛋白的表征 | 第78-80页 |
| 5.3.3 检测可行性及检测条件的优化 | 第80-81页 |
| 5.3.4 传感性能 | 第81页 |
| 5.3.5 干扰研究 | 第81-82页 |
| 5.3.6 磁性传感体系的实样检测 | 第82-83页 |
| 5.4 小结 | 第83-84页 |
| 第6章 “三合一”复合纳米花信号放大用于E.coli超灵敏检测 | 第84-94页 |
| 6.1 引言 | 第84-85页 |
| 6.2 实验部分 | 第85-87页 |
| 6.2.1 试剂和材料 | 第85-86页 |
| 6.2.2 大肠杆菌O157:H7样品的培养及制备 | 第86页 |
| 6.2.3 抗体-酶-无机纳米花的制备 | 第86页 |
| 6.2.4 使用基于三合一纳米花的双抗夹心ELISA法定量检测大肠杆菌O157 :H7 | 第86-87页 |
| 6.3 结果和讨论 | 第87-93页 |
| 6.3.1 三合一纳米花的表征 | 第87-88页 |
| 6.3.2 三合一纳米花基ELISA检测条件的优化 | 第88-89页 |
| 6.3.3 三合一纳米花基ELISA对于检测大肠杆菌O157:H7的性能研究 | 第89-93页 |
| 6.4 小结 | 第93-94页 |
| 第7章 结论 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-121页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
