摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-38页 |
·前言 | 第16页 |
·植物根际促生细菌的研究 | 第16-24页 |
·植物根际促生细菌的种类 | 第16-18页 |
·直接促进植物生长功能 | 第18-22页 |
·间接促进植物生长功能 | 第22-23页 |
·植物根际促生菌的应用 | 第23-24页 |
·乙烯的研究进展 | 第24-28页 |
·乙烯的生物合成 | 第24-25页 |
·应激乙烯 | 第25-26页 |
·胁迫信号传导和应答有关的基因 | 第26-28页 |
·ACC 脱氨酶的研究进展 | 第28-33页 |
·ACC 脱氨酶的生化特征 | 第28页 |
·蛋白质结构 | 第28-29页 |
·PLP 依赖酶和ACC 脱氨酶 | 第29-31页 |
·转录机制 | 第31-33页 |
·含ACC 脱氨酶的PGPR 研究现状 | 第33-36页 |
·立题依据 | 第36-38页 |
第二章 施氏假单胞菌A1501 中acdS 基因的生物信息学分析 | 第38-46页 |
·材料 | 第38页 |
·菌株 | 第38页 |
·酶和试剂 | 第38页 |
·方法 | 第38-40页 |
·细菌基因组RNA 的提取 | 第38-39页 |
·RNA 反转录为cDNA | 第39页 |
·反转录PCR(RT-PCR) | 第39-40页 |
·进化树构建与分析方法 | 第40页 |
·结果与分析 | 第40-45页 |
·施氏假单胞菌A1501acdS 基因转录单元分析 | 第40-42页 |
·G+C 含量分析 | 第42页 |
·ACC 脱氨酶基因(acdS)表达的转录调控分析 | 第42-43页 |
·P.stutzeri A1501 中acdS 与其他菌中同源基因的进化分析 | 第43-44页 |
·蛋白质结构预测 | 第44-45页 |
·讨论 | 第45-46页 |
第三章 acdS 基因突变株的构建及功能互补 | 第46-57页 |
·材料 | 第46-47页 |
·菌株和质粒 | 第46页 |
·培养基 | 第46-47页 |
·酶和化学试剂 | 第47页 |
·主要仪器 | 第47页 |
·方法 | 第47-51页 |
·碱裂解法小量提取细菌质粒 | 第47-48页 |
·细菌基因组DNA 的提取 | 第48页 |
·基因的PCR 扩增 | 第48-49页 |
·PCR 产物的纯化 | 第49页 |
·琼脂糖凝胶电泳中DNA 片段的回收 | 第49-50页 |
·酶切及连接反应 | 第50页 |
·高效率转化感受态细胞的制备 | 第50页 |
·大肠杆菌电击转化 | 第50-51页 |
·三亲结合实验 | 第51页 |
·结果分析 | 第51-56页 |
·acdS 突变株的构建 | 第51-52页 |
·acdS 基因重组载体的构建 | 第52-56页 |
·讨论 | 第56-57页 |
第四章 acdS 突变株的表型鉴定及与水稻的相互作用 | 第57-73页 |
·材料 | 第57-58页 |
·菌株 | 第57页 |
·培养基 | 第57-58页 |
·化学试剂 | 第58页 |
·主要仪器 | 第58页 |
·方法 | 第58-63页 |
·生长曲线的测定 | 第58-59页 |
·固氮酶活的测定 | 第59页 |
·考马斯亮蓝法测定全细胞的蛋白含量 | 第59-60页 |
·ACC 脱氨酶活性测定 | 第60页 |
·细菌基因组RNA 的提取 | 第60-61页 |
·RNA 反转录为cDNA | 第61页 |
·实时荧光定量PCR 实验 | 第61-62页 |
·逆境胁迫实验 | 第62页 |
·Biolog 分析野生型与突变株对碳源的利用情况 | 第62页 |
·菌株与水稻的互作 | 第62-63页 |
·结果分析 | 第63-73页 |
·野生型、突变株及功能互补菌株生长曲线的测定 | 第63-64页 |
·胁迫条件下野生型与acdS 突变株的生长状况 | 第64-65页 |
·acdS 基因缺失对盐胁迫耐受性影响 | 第65-66页 |
·ACC 酶活性 | 第66页 |
·acdS 突变对固氮酶活性的影响 | 第66-67页 |
·qRT-PCR 分析验证 | 第67-69页 |
·Biolog 分析野生型与突变株对多种碳源的利用情况 | 第69-70页 |
·acdS 突变株与野生型在不同盐浓度下对水稻的生长状况 | 第70-71页 |
·acdS 突变株与野生型在不同重金属离子下对水稻的生长状况 | 第71-73页 |
第五章 结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-85页 |
致谢 | 第85-86页 |
作者简历 | 第86页 |