| 第一部分 中文摘要 | 第4-7页 |
| 第一部分 英文摘要 | 第7页 |
| 第二部分 中文摘要 | 第11-15页 |
| 第二部分 英文摘要 | 第15-20页 |
| 第一部分 肝癌血管生成的分子机制:信号传导通路的不协调活化 | 第20-44页 |
| 引言 | 第20页 |
| 材料与方法 | 第20-30页 |
| 标本分组 | 第20-21页 |
| 主要试剂 | 第21页 |
| 仪器及设备 | 第21-22页 |
| 方法 | 第22-30页 |
| 逆转录聚合酶联反应(RT-PCR) | 第22-26页 |
| Western blot | 第26-29页 |
| 病理学检查 | 第29页 |
| 免疫组织化学 | 第29-30页 |
| 统计学分析 | 第30页 |
| 结果 | 第30-31页 |
| 两条通路的表达与肿瘤血管密度的关系 | 第30-31页 |
| 肝癌的浸润性及转移与血管生成的信号传导通路活化的关系 | 第31页 |
| 讨论 | 第31-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 附图 | 第38-44页 |
| 第二部分 在体外EGCG抑制内皮细胞304的血管形成的实验研究 | 第44-74页 |
| 前言 | 第44-45页 |
| 材料与方法 | 第45-52页 |
| 实验方法 | 第47-45页 |
| 实验材料 | 第45-47页 |
| 体外实验 | 第47-51页 |
| 细胞培养 | 第47页 |
| HepG_2条件培养基(HepG_2 Conditional Medium CM)的制备 | 第47页 |
| EGCG对内皮细胞ECV304和HepG_2肝癌细胞株增殖的影响 | 第47-48页 |
| 体外内皮细胞血管样结构培养试验 | 第48页 |
| KDR、Tie2基因转录水平mRNA检测 | 第48-49页 |
| 免疫沉淀及蛋白硝酸银染色 | 第49-51页 |
| Western Blot | 第51页 |
| 动物实验 | 第51-52页 |
| 动物模型建立 | 第52页 |
| 实验方法 | 第52页 |
| 移植肿瘤血管生成的检测 | 第52页 |
| 统计学处理 | 第52页 |
| 结果 | 第52-54页 |
| EGCG对内皮细胞ECV304及肝癌细胞HepG2增值的影响 | 第52页 |
| EGCG对内皮细胞受体KDR和Tie2基因转录水平的影响 | 第52-53页 |
| EGCG抑制内皮细胞受体KDR和Tie2磷酸化的作用 | 第53页 |
| EGCG对体外血管生成抑制作用 | 第53-54页 |
| EGCG体内抑制肿瘤生长及血管形成作用 | 第54页 |
| 讨论 | 第54-59页 |
| 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 附图 | 第64-74页 |
| 综述一 肿瘤的生长转移与血管生成 | 第74-92页 |
| 综述二 EGCG抑制肿瘤血管生成的作用 | 第92-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
