| 缩略语表 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 1-MCP对乙烯效应的抑制模式 | 第12-14页 |
| 1.2 影响1-MCP效应的主要因子 | 第14-15页 |
| 1.2.1 处理浓度、时间和温度 | 第14页 |
| 1.2.2 植物组织的发育阶段和成熟度 | 第14页 |
| 1.2.3 乙烯受体的再生 | 第14-15页 |
| 1.3 1-MCP的生理效应 | 第15-17页 |
| 1.3.1 乙烯合成及相关酶编码基因的表达 | 第15-16页 |
| 1.3.1.1 1-MCP与乙烯合成 | 第15页 |
| 1.3.1.2 1-MCP与乙烯合成相关酶及其编码基因的表达 | 第15-16页 |
| 1.3.2 1-MCP与呼吸作用 | 第16页 |
| 1.3.3 1-MCP与膜脂过氧化 | 第16页 |
| 1.3.4 1-MCP与果实软化 | 第16-17页 |
| 1.4 1-MCP对园艺产品品质的影响 | 第17-18页 |
| 1.4.1 1-MCP与叶绿素降解 | 第17页 |
| 1.4.2 1-MCP对可滴定酸和可溶性固形物含量的影响 | 第17-18页 |
| 1.5 1-MCP与果实冷害 | 第18页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-25页 |
| 2.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.1 叶片材料 | 第19页 |
| 2.1.2 果实材料 | 第19页 |
| 2.1.3 分子生物学试剂 | 第19页 |
| 2.1.3.1 文库构建试剂盒 | 第19页 |
| 2.1.3.2 PCR引物 | 第19页 |
| 2.2 果实材料1-MCP处理 | 第19-20页 |
| 2.2.1 桃果实1-MCP处理 | 第19页 |
| 2.2.2 猕猴桃果实1-MCP处理 | 第19-20页 |
| 2.3 分子生物学实验方法 | 第20-23页 |
| 2.3.1 DNA提取与纯化 | 第20-21页 |
| 2.3.2 猕猴桃基因组DNA Sau 3I的不完全酶切 | 第21页 |
| 2.3.3 DNA Sau3 I不完全酶切DNA片段的分级回收与部分补平 | 第21页 |
| 2.3.4 文库噬菌体臂与部分补平DNA片段连接、包装与滴度测定 | 第21页 |
| 2.3.5 噬菌体文库扩增 | 第21页 |
| 2.3.6 RNA提取 | 第21页 |
| 2.3.7 RT-PCR | 第21-22页 |
| 2.3.8 文库为模板的常规PCR | 第22页 |
| 2.3.9 PCR产物的克隆 | 第22页 |
| 2.3.10 Northern杂交 | 第22-23页 |
| 2.4 生理指标测定方法 | 第23-25页 |
| 2.4.1 果肉硬度 | 第23页 |
| 2.4.2 TSS含量 | 第23页 |
| 2.4.3 LOX活性 | 第23页 |
| 2.4.4 丙二烯氧合酶(AOS)活性 | 第23页 |
| 2.4.5 超氧自由基(O_2~(?))产生速率 | 第23页 |
| 2.4.6 果肉相对电导率 | 第23页 |
| 2.4.7 果实乙烯释放量 | 第23页 |
| 2.4.8 ACC含量 | 第23页 |
| 2.4.9 ACO活性 | 第23页 |
| 2.4.10 ACS活性 | 第23-24页 |
| 2.4.11 PPO活性 | 第24页 |
| 2.4.12 总酚含量 | 第24页 |
| 2.4.13 褐变指数统计方法 | 第24-25页 |
| 第三章 猕猴桃基因组文库构建以及猕猴桃、桃果实成熟衰老相关基因的克隆 | 第25-31页 |
| 3.1 结果与分析 | 第25-30页 |
| 3.1.1 猕猴桃基因组文库的构建 | 第25-26页 |
| 3.1.1.1 猕猴桃基因组DNA的制备 | 第25页 |
| 3.1.1.2 猕猴桃基因组DNA的部分酶切与分级回收 | 第25-26页 |
| 3.1.1.3 猕猴桃基因组DNA文库的建成 | 第26页 |
| 3.1.2 猕猴桃Exps基因的克隆与序列分析 | 第26-28页 |
| 3.1.3 桃成熟果实Exps、ACO、ETR和PPO基因的cDNA克隆 | 第28-30页 |
| 3.1.3.1 桃果实RNA的提取 | 第28页 |
| 3.1.3.2 桃果实Exps、ACO、ETR和PPO基因的cDNA克隆 | 第28-30页 |
| PP-PPO | 第29-30页 |
| 3.2 讨论 | 第30-31页 |
| 第四章 1-MCP对采后桃果实后熟软化和Pp-Exp1，Pp-Exp3和Pp-ACO1表达的影响 | 第31-36页 |
| 4.1 结果与分析 | 第31-34页 |
| 4.1.1 1-MCP处理对桃果实后熟进程中硬度、TSS的影响 | 第31页 |
| 4.1.2 1-MCP处理对桃果实后熟进程中乙烯生物合成的影响 | 第31-33页 |
| 4.1.3 1-MCP处理对桃果实后熟进程中LOX活性、O_2~(?)生成速率和相对电导率的影响 | 第33-34页 |
| 4.1.4 1-MCP处理对桃果实后熟进程中Pp-Exp1，Pp-Exp3和Pp-ACO1表达的调控 | 第34页 |
| 4.2 讨论 | 第34-36页 |
| 第五章 1-MCP对桃果实冷害褐变和Pp-PPO表达的影响 | 第36-43页 |
| 5.1 结果与分析 | 第36-43页 |
| 5.1.1 1-MCP处理对桃果肉组织褐变与相对电导率变化的影响 | 第36-37页 |
| 5.1.2 1-MCP处理对桃果肉组织PPO活性和酚类物质含量变化的影响 | 第37-39页 |
| 5.1.3 1-MCP处理对桃果肉组织LOX活性、O_2~(?)产生速率变化的影响 | 第39-40页 |
| 5.1.4 1-MCP对桃果实乙烯释放变化的影响 | 第40页 |
| 5.1.5 1-MCP对桃果肉组织货架期间Pp-PPO表达的影响 | 第40-43页 |
| 第六章 1-MCP对采后不同衰老阶段猕猴桃果实后熟软化的影响及其生理基础 | 第43-48页 |
| 6.1 结果与分析 | 第43-46页 |
| 6.1.1 1-MCP处理对采后不同衰老阶段猕猴桃果实后熟软化和乙烯释放的影响 | 第43-45页 |
| 6.1.2 1-MCP处理对采后猕猴桃果实Stage Ⅰ的LOX、AOS活性和相对电导率的影响 | 第45-46页 |
| 6.2 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| Abstract | 第55页 |
| 博士学习阶段参加研究课题和发表论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
