| 中文摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 缩略语 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 研究现状、成果 | 第18-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-21页 |
| 一、大鼠在体心肌I/R及IPC模型的建立 | 第21-33页 |
| 1.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.1.2 药品与试剂 | 第21页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第21-22页 |
| 1.1.4 实验器材与耗材 | 第22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 1.2.1 主要溶液的配制 | 第22-23页 |
| 1.2.2 大鼠在体心肌I/R及IPC模型的建立 | 第23-24页 |
| 1.2.3 实验分组与流程 | 第24页 |
| 1.2.4 心电图指标的检测 | 第24-25页 |
| 1.2.5 TTC染色法测定心肌梗死范围 | 第25页 |
| 1.2.6 统计学分析 | 第25-26页 |
| 1.3 结果 | 第26-32页 |
| 1.3.1 MAP | 第26页 |
| 1.3.2 HR | 第26-29页 |
| 1.3.3 ST-段 | 第29-31页 |
| 1.3.4 缺血期心律失常发生情况 | 第31页 |
| 1.3.5 心肌梗死范围 | 第31-32页 |
| 1.4 小结 | 第32-33页 |
| 二、IPC-MVS的分离、提取及超微结构观察 | 第33-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 药品与试剂 | 第33页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第33页 |
| 2.1.4 实验器材与耗材 | 第33-34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-36页 |
| 2.2.1 主要溶液的配制 | 第34-35页 |
| 2.2.2 IPC-MVs的分离与提取 | 第35页 |
| 2.2.3 IPC-MVs的蛋白定量 | 第35-36页 |
| 2.2.4 透射电镜观察IPC-MVs的形态 | 第36页 |
| 2.3 结果 | 第36-37页 |
| 2.3.1 IPC-MVs的蛋白定量 | 第36-37页 |
| 2.3.2 IPC-MVs的电镜形态学观察 | 第37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 三、IPC-MVS对I/R大鼠MAP、HR、ST-段及心肌组织坏死的影响 | 第38-52页 |
| 3.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第38页 |
| 3.1.2 药品与试剂 | 第38页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第38-39页 |
| 3.1.4 实验器材与耗材 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.2.1 主要溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.2.2 IPC-MVs的分离与提取 | 第40页 |
| 3.2.3 IPC-MVs的蛋白定量 | 第40页 |
| 3.2.4 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第40-41页 |
| 3.2.5 心电图指标的检测 | 第41页 |
| 3.2.6 HE染色观察心肌组织病理形态 | 第41页 |
| 3.2.7 TTC染色法测定心肌梗死范围 | 第41页 |
| 3.2.8 血清LDH活力检测 | 第41-42页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第42页 |
| 3.3 结果 | 第42-51页 |
| 3.3.1 MAP | 第42-43页 |
| 3.3.2 HR | 第43页 |
| 3.3.3 ST-段 | 第43-48页 |
| 3.3.4 心肌组织形态学变化 | 第48-49页 |
| 3.3.5 心肌梗死范围 | 第49-50页 |
| 3.3.6 血清LDH活力 | 第50-51页 |
| 3.4 小结 | 第51-52页 |
| 四、IPC-MVS对I/R大鼠心肌细胞凋亡的影响 | 第52-60页 |
| 4.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第52页 |
| 4.1.2 药品与试剂 | 第52页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第52-53页 |
| 4.1.4 实验器材与耗材 | 第53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.2.1 IPC-MVs的分离与提取 | 第53页 |
| 4.2.2 IPC-MVs的蛋白定量 | 第53页 |
| 4.2.3 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第53页 |
| 4.2.4 TUNEL法测定心肌细胞凋亡 | 第53-54页 |
| 4.2.5 心肌组织caspase 3 活力检测 | 第54-55页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第55页 |
| 4.3 结果 | 第55-59页 |
| 4.3.1 心肌细胞凋亡指数 | 第55-57页 |
| 4.3.2 心肌组织caspase 3 活力 | 第57-59页 |
| 4.4 小结 | 第59-60页 |
| 五、IPC-MVS对I/R大鼠心肌组织中线粒体相关蛋白表达的影响 | 第60-67页 |
| 5.1 实验材料 | 第60-62页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第60页 |
| 5.1.2 药品与试剂 | 第60-61页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第61页 |
| 5.1.4 实验器材与耗材 | 第61-62页 |
| 5.2 实验方法 | 第62-65页 |
| 5.2.1 主要溶液的配制 | 第62-63页 |
| 5.2.2 IPC-MVs的分离与提取 | 第63页 |
| 5.2.3 IPC-MVs的蛋白定量 | 第63-64页 |
| 5.2.4 实验分组及IPC-MVs处理方案 | 第64页 |
| 5.2.5 Western blot法检测心肌组织中Bcl-2 及Bax的蛋白表达 | 第64-65页 |
| 5.3 结果 | 第65-66页 |
| 5.3.1 心肌组织中Bcl-2 及Bax的蛋白表达 | 第65-66页 |
| 5.4 小结 | 第66-67页 |
| 讨论 | 第67-73页 |
| 1. 大鼠在体心肌I/R及IPC模型的建立 | 第67-68页 |
| 2. IPC-MVS的分离提取与超微结构观察 | 第68-70页 |
| 2.1 IPC-MVs的分离及提取 | 第68页 |
| 2.2 IPC-MVs的超微结构观察 | 第68-70页 |
| 3. IPC-MVS对I/R大鼠心肌组织的影响 | 第70-71页 |
| 3.1 MVs在心血管系统疾病中的作用 | 第70-71页 |
| 3.2 IPC-MVs对I/R所致心肌组织坏死的影响 | 第71页 |
| 4. IPC-MVS对I/R大鼠心肌细胞凋亡的影响 | 第71-73页 |
| 4.1 IPC-MVs抗I/R大鼠心肌细胞凋亡 | 第71-72页 |
| 4.2 IPC-MVs通过抑制线粒体介导的细胞凋亡途径发挥抗凋亡作用 | 第72-73页 |
| 总结与展望 | 第73-74页 |
| 全文结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第83-84页 |
| 综述 细胞微囊泡的生物学功能及其在缺血性心脏病中的作用 | 第84-97页 |
| 综述参考文献 | 第91-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 个人简历 | 第98页 |
