| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-19页 |
| 1.1 研究的目的与意义 | 第12-13页 |
| 1.2 冬小麦抗寒性研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 冬小麦抗寒性的生理特性研究状况 | 第13-14页 |
| 1.2.2 冬小麦抗寒基因的研究状况 | 第14页 |
| 1.3 低温对植物的危害 | 第14-15页 |
| 1.4 植物响应低温胁迫应答机制 | 第15-16页 |
| 1.4.1 抗氧化系统与抗寒性的研究 | 第15-16页 |
| 1.4.2 渗透调节物质与抗寒性的研究 | 第16页 |
| 1.5 低温信号转录因子 | 第16-19页 |
| 1.5.1 CBF/DREB类转录因子 | 第17页 |
| 1.5.2 WRKY转录因子 | 第17-18页 |
| 1.5.3 MYB转录因子 | 第18页 |
| 1.5.4 NAC转录因子 | 第18页 |
| 1.5.5 b ZIP转录因子 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 试验设计及取样方法 | 第19页 |
| 2.1.3 试验所需溶液和试剂 | 第19-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 试验材料的处理 | 第21页 |
| 2.2.2 过氧化物酶POD活性的测定 | 第21页 |
| 2.2.3 多酚氧化酶PPO活性的测定 | 第21页 |
| 2.2.4 脯氨酸含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 分蘖节RNA的提取 | 第22页 |
| 2.2.6 RNA的琼脂糖电泳检测 | 第22-23页 |
| 2.2.7 c DNA模板的合成 | 第23页 |
| 2.2.8 定量引物的设计 | 第23-24页 |
| 2.2.9 退火温度的确定 | 第24-25页 |
| 2.2.10 实时定量PCR体系及程序 | 第25页 |
| 2.2.11 实时定量PCR数据处理 | 第25-26页 |
| 2.3 试验器材 | 第26页 |
| 2.4 试验数据处理 | 第26-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-43页 |
| 3.1 过氧化物酶POD活性比较分析 | 第27页 |
| 3.2 多酚氧化酶PPO活性比较分析 | 第27-28页 |
| 3.3 脯氨酸含量的比较分析 | 第28-29页 |
| 3.4 室内低温处理下冬小麦品种间转录因子的表达分析 | 第29-43页 |
| 3.4.1 总RNA的提取及凝胶电泳检测结果 | 第30页 |
| 3.4.2 确定目的基因的退火温度 | 第30-31页 |
| 3.4.3 目的基因的表达分析 | 第31-43页 |
| 4 讨论 | 第43-47页 |
| 4.1 低温下冬小麦过氧化物酶POD活性变化 | 第43页 |
| 4.2 低温下冬小麦多酚氧化酶PPO活性变化 | 第43-44页 |
| 4.3 低温下冬小麦脯氨酸含量的变化 | 第44页 |
| 4.4 转录因子与植物抗寒性的关系 | 第44-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-58页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第58页 |