| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩写表 | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-39页 |
| 1 Ca~(2+)在调控花粉萌发和花粉管极性生长中的作用 | 第15-25页 |
| 1.1 Ca~(2+)是花粉萌发和花粉管极性生长必须的调控因子 | 第15-16页 |
| 1.2 Ca~(2+)振荡和花粉管生长 | 第16-18页 |
| 1.3 胞质Ca~(2+)浓度梯度的形成和维持 | 第18-21页 |
| 1.4 Ca~(2+)与调控花粉萌发和花粉管生长的其它信号因子的关系 | 第21-25页 |
| 2 植物钙信号感受蛋白在花粉萌发和花粉管生长中的作用 | 第25-35页 |
| 2.1 CaM家族 | 第26-27页 |
| 2.2 CDPK家族 | 第27-29页 |
| 2.3 CBL-CIPK家族 | 第29-30页 |
| 2.4 CML家族 | 第30-35页 |
| 3 K~+在花粉萌发和花粉管生长中的作用 | 第35-37页 |
| 3.1 K~+是维持花粉萌发和花粉管生长必须的因子 | 第35-36页 |
| 3.2 Ca~(2+)信号介导花粉管中K~+通道活性的调控 | 第36-37页 |
| 4 立题依据及研究内容 | 第37-39页 |
| 第二章 CML25参与调控花粉萌发及花粉管生长 | 第39-80页 |
| 引言 | 第39页 |
| 1 实验材料与方法 | 第39-62页 |
| 1.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 1.2 常用培养基与溶液的配制 | 第40-41页 |
| 1.3 实验方法 | 第41-62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-77页 |
| 2.1 CML25基因编码的氨基酸序列分析 | 第62-63页 |
| 2.2 CML25蛋白的原核表达及纯化 | 第63-65页 |
| 2.3 CML25具有Ca~(2+)结合活性 | 第65-67页 |
| 2.4 CML25表达模式 | 第67-68页 |
| 2.5 CML25是胞质表达定位的蛋白质 | 第68-69页 |
| 2.6 CML25功能缺失突变体的获取及分子鉴定 | 第69-71页 |
| 2.7 CML25正向调控花粉萌发和花粉管生长 | 第71-77页 |
| 3 讨论 | 第77-80页 |
| 第三章 CML25参与调控花粉萌发和花粉管生长的作用机制 | 第80-95页 |
| 引言 | 第80页 |
| 1 实验材料与方法 | 第80-83页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第80-81页 |
| 1.2 实验方法 | 第81-83页 |
| 2 结果与分析 | 第83-92页 |
| 2.1 cml25突变体花粉粒核发育正常 | 第83-84页 |
| 2.2 胞外不同浓度的Ca~(2+)对花粉萌发和花粉管生长的影响 | 第84-86页 |
| 2.3 胞外不同浓度的K~+对花粉萌发和花粉管生长的影响 | 第86-87页 |
| 2.4 CML25的功能缺失改变了胞内Ca~(2+)信号 | 第87-89页 |
| 2.5 CML25介导Ca~(2+)十对花粉和花粉管质膜内向K~+通道的调控 | 第89-92页 |
| 3 讨论 | 第92-95页 |
| 第四章 CML25可能的互作蛋白CIP1功能的初步探究 | 第95-111页 |
| 引言 | 第95页 |
| 1 实验材料与方法 | 第95-105页 |
| 1.1 实验材料 | 第95-96页 |
| 1.2 常用培养基与溶液的配制 | 第96-97页 |
| 1.3 实验方法 | 第97-105页 |
| 2 结果与分析 | 第105-109页 |
| 2.1 3AT浓度筛选 | 第105-106页 |
| 2.2 筛选酵母文库和蛋白互作性验证 | 第106-107页 |
| 2.3 蛋白互作的双分子荧光互补(BiFC)验证 | 第107-108页 |
| 2.4 CIP1是胞质表达定位蛋白质 | 第108-109页 |
| 2.5 CIP1负调控花粉管生长 | 第109页 |
| 3 讨论 | 第109-111页 |
| 总结 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-131页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第133页 |
