| 中英文缩略词对照(Abbreviations) | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1 前言 | 第14-16页 |
| 2 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第17-18页 |
| 3 实验方法 | 第18-29页 |
| 3.1 大鼠佐剂性关节炎模型的构建 | 第18页 |
| 3.2 实验动物的分组与处理 | 第18页 |
| 3.3 大鼠踝关节病理学检查 | 第18-19页 |
| 3.4 大鼠踝关节免疫组织化学染色 | 第19页 |
| 3.5 大鼠膝关节关节软骨组织蛋白和RNA的提取 | 第19-20页 |
| 3.6 原代大鼠关节软骨细胞的提取与培养 | 第20页 |
| 3.7 原代大鼠关节软骨细胞的分组与处理 | 第20-21页 |
| 3.8 原代大鼠关节软骨细胞总RNA的提取和逆转录 | 第21-22页 |
| 3.9 原代大鼠关节软骨细胞总蛋白的提取和定量 | 第22-23页 |
| 3.10 Real time-PCR | 第23-24页 |
| 3.11 Western Blot | 第24-25页 |
| 3.12 细胞转染 | 第25页 |
| 3.13 MTT | 第25-26页 |
| 3.14 细胞免疫荧光染色 | 第26页 |
| 3.15 ELISA法检测IL-1β 和IL-18 的含量 | 第26-27页 |
| 3.16 LDH检测 | 第27-28页 |
| 3.17 ROS荧光检测 | 第28页 |
| 3.18 AO/EB染色 | 第28页 |
| 3.19 激光共聚焦显微镜测细胞内[Ca~(2+)]i | 第28页 |
| 3.20 数据处理 | 第28-29页 |
| 4 实验结果 | 第29-63页 |
| 4.1 阻断ASIC1a抑制AA大鼠关节软骨细胞焦亡 | 第29-36页 |
| 4.1.1 阻断ASIC1a缓解AA大鼠关节炎状态 | 第29-33页 |
| 4.1.2 阻断ASIC1a抑制佐剂性关节炎大鼠关节软骨细胞焦亡 | 第33-36页 |
| 4.2 阻断ASIC1a抑制大鼠关节软骨细胞焦亡的机制研究 | 第36-63页 |
| 4.2.1 原代大鼠关节软骨细胞的分离培养和鉴定 | 第36页 |
| 4.2.2 胞外酸化处理对原代大鼠关节软骨细胞生存率的影响 | 第36-37页 |
| 4.2.3 胞外酸化处理对原代大鼠关节软骨细胞焦亡的影响 | 第37-45页 |
| 4.2.4 ASIC1a在酸化诱导的原代大鼠软骨细胞焦亡中的作用 | 第45-53页 |
| 4.2.5 Ca~(2+) 在ASIC1a介导的原代大鼠软骨细胞焦亡中的作用 | 第53-58页 |
| 4.2.6 ROS在ASIC1a介导的原代大鼠软骨细胞焦亡中的作用 | 第58-63页 |
| 5 讨论 | 第63-65页 |
| 6 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 附录 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 综述 | 第73-94页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
