| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-30页 |
| 1.1 铝胁迫对植物的影响 | 第15-18页 |
| 1.1.1 铝胁迫对根尖伸长的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.2 铝胁迫对根尖有机酸分泌的影响 | 第16-17页 |
| 1.1.3 铝胁迫对根尖抗氧化系统酶 | 第17-18页 |
| 1.2 水杨酸对抗逆性的影响 | 第18-29页 |
| 1.2.1 水杨酸的合成 | 第18-20页 |
| 1.2.2 水杨酸对生物胁迫的影响 | 第20-23页 |
| 1.2.3 水杨酸对非生物胁迫的影响 | 第23-25页 |
| 1.2.4 SA与其他激素相互作用 | 第25-29页 |
| 1.3 本研究的目的以及意义 | 第29-30页 |
| 第二章 铝胁迫对拟南芥突变体nahG与npr1-1生理生化指标和根系有机酸分泌的影响 | 第30-56页 |
| 2.1 试验材料 | 第31页 |
| 2.2 材料培养与处理 | 第31-32页 |
| 2.3 测定指标和方法 | 第32-37页 |
| 2.3.1 相对根伸长率 | 第32页 |
| 2.3.2 根尖铬天青染色 | 第32页 |
| 2.3.3 拟南芥内源SA的测定 | 第32-33页 |
| 2.3.4 拟南芥根系分泌物有机酸收集与含量测定 | 第33页 |
| 2.3.5 H_2O_2和MDA含量测定 | 第33-34页 |
| 2.3.6 根尖抗氧化系统酶活性的测定 | 第34页 |
| 2.3.7 基因表达分析 | 第34-36页 |
| 2.3.8 免疫共沉淀分析 | 第36页 |
| 2.3.9 质膜H~+-ATPase活性和H~+泵活性的测定 | 第36-37页 |
| 2.4 数据分析 | 第37页 |
| 2.5 结果与分析 | 第37-51页 |
| 2.5.1 铝胁迫对两种水杨酸突变体根伸长的影响 | 第37-39页 |
| 2.5.2 铝胁迫下拟南芥突变体的根尖染色 | 第39-40页 |
| 2.5.3 铝胁迫下拟南芥突变体的SA含量 | 第40-41页 |
| 2.5.4 铝胁迫下拟南芥突变体根尖柠檬酸分泌量的影响 | 第41-42页 |
| 2.5.5 铝胁迫对突变体的MDA和H_2O_2含量的影响 | 第42-43页 |
| 2.5.6 铝胁迫对拟南芥突变体根尖抗氧化系统酶活性的影响 | 第43-46页 |
| 2.5.7 铝胁迫对拟南芥突变体相关基因的表达 | 第46-48页 |
| 2.5.8 铝胁迫下拟南芥突变体根中14-3-3蛋白、质膜H+-ATPase蛋白互作影响以及H~+-ATP酶活性及H~+泵活性的影响 | 第48-51页 |
| 2.6 讨论 | 第51-56页 |
| 2.6.1 拟南芥突变体nahG与npr1-的铝耐受性性分析 | 第51-52页 |
| 2.6.2 SA对铝诱导的拟南芥突变体根尖氧化胁迫的调控作用分析 | 第52-53页 |
| 2.6.3 SA对Al~(3+)诱导拟南芥突变体根系苹果酸与柠檬酸分泌的调控作用分析 | 第53-56页 |
| 第三章 铝处理下两种水杨酸突变体nahG与npr1-1的转录组差异分析 | 第56-73页 |
| 3.1 材料与方法 | 第56-59页 |
| 3.1.1 材料培养 | 第56-57页 |
| 3.1.2 拟南芥根尖RNA提取 | 第57页 |
| 3.1.3 转录组测序样品的制备 | 第57页 |
| 3.1.4 数据分析 | 第57-59页 |
| 3.2 结果 | 第59-68页 |
| 3.2.1 拟南芥不同处理的分组间差异统计 | 第59-60页 |
| 3.2.2 差异表达基因GO富集分类 | 第60-63页 |
| 3.2.3 相关基因的差异表达验证 | 第63-65页 |
| 3.2.4 KEGG富集分析 | 第65-68页 |
| 3.3 讨论 | 第68-73页 |
| 3.3.1 转录组高通量测序在分子生物学研究中的应用 | 第68-69页 |
| 3.3.2 铝胁迫下拟南芥的基因表达差异分析 | 第69页 |
| 3.3.3 SA对铝胁迫下拟南芥基因表达差异影响的分析 | 第69-71页 |
| 3.3.4 SA对铝胁迫下拟南芥抗氧化系统相关基因表达差异影响的分析 | 第71-73页 |
| 第四章 总结与展望 | 第73-75页 |
| 4.1 总结 | 第73-74页 |
| 4.2 展望 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-87页 |
| 附录A | 第87页 |
