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人肠道甲基戊糖梭菌膜整合焦磷酸酶的基因克隆和抗盐功能分析

摘要第3-5页
Abstract第5-7页
第1章 引言第13-24页
    1.1 文献综述——膜整合焦磷酸酶的研究第13-23页
        1.1.1 膜PPase概述第13页
        1.1.2 膜PPase的类型第13-16页
        1.1.3 膜PPase的结构研究第16页
        1.1.4 膜PPase的转运机制第16-18页
        1.1.5 膜PPase的进化和特征残基第18-22页
        1.1.6 膜PPase的生物学意义及其在基因工程上的应用第22-23页
    1.2 本论文的研究目的及意义第23-24页
第2章 CmPP的基因克隆及其重组大肠杆菌的抗盐性分析第24-43页
    2.1 材料第24-26页
        2.1.1 宿主菌及载体第24页
        2.1.2 主要试剂和耗材第24-26页
            2.1.2.1 生化和分子生物学试剂第24-25页
            2.1.2.2 常用试剂配制第25-26页
        2.1.3 主要仪器设备第26页
    2.2 方法第26-34页
        2.2.1 粪便基因组DNA的提取第26-27页
        2.2.2 核酸琼脂糖凝胶电泳第27-28页
        2.2.3 DNA琼脂糖凝胶电泳纯化回收第28页
        2.2.4 质粒DNA提取第28-29页
        2.2.5 酶切产物的溶液纯化第29-30页
        2.2.6 大肠杆菌感受态细胞制备第30页
        2.2.7 大肠杆菌DNA转化第30页
        2.2.8 CmPP的基因扩增及其大肠杆菌表达载体的构建第30-33页
            2.2.8.1 CmPP基因的扩增第30-31页
            2.2.8.2 CmPP PCR产物的酶切第31-32页
            2.2.8.3 载体pET32a(+)的酶切第32页
            2.2.8.4 连接和转化第32-33页
        2.2.9 菌落PCR鉴定第33页
        2.2.10 重组质粒pET(CmPP)的提取和测序第33页
        2.2.11 CmPP生物信息学分析第33页
        2.2.12 CmPP重组大肠杆菌的抗盐性分析第33-34页
    2.3 结果与分析第34-41页
        2.3.1 CmPP基因的扩增第34页
        2.3.2 CmPP基因的克隆第34-36页
        2.3.3 CmPP基因的序列分析第36-38页
        2.3.4 CmPP蛋白的跨膜结构分析第38-39页
        2.3.5 CmPP蛋白的系统进化树分析第39页
        2.3.6 CmPP重组大肠杆菌的抗盐性分析第39-41页
    2.4 小结第41-43页
第3章 CmPP重组酵母菌的抗盐性分析第43-51页
    3.1 材料第43-44页
        3.1.1 宿主菌及载体第43页
        3.1.2 主要试剂和耗材第43-44页
            3.1.2.1 生化和分子生物学试剂第43页
            3.1.2.2 常用试剂配制第43-44页
    3.2 实验方法第44-47页
        3.2.1 酵母感受态细胞制备第44页
        3.2.2 酵母表达载体pYES2(CmPP)的构建第44-45页
        3.2.3 重组质粒pYES2(CmPP)的酵母转化及鉴定第45-46页
            3.2.3.1 酵母转化第45-46页
            3.2.3.2 CmPP重组酵母菌的鉴定第46页
        3.2.4 CmPP重组酵母菌的抗盐分析第46-47页
        3.2.5 其它所用方法同于 2.2.3第47页
    3.3 结果与分析第47-50页
        3.3.1 酵母表达载体pYES2(CmPP)的构建第47页
        3.3.2 CmPP重组酵母菌的鉴定第47-48页
        3.3.3 CmPP重组酵母菌的抗盐性分析第48-50页
    3.4 小结第50-51页
第4章 Cm PP转基因烟草植株的抗盐性分析第51-75页
    4.1 材料第51-52页
        4.1.1 实验材料第51页
        4.1.2 主要试剂和耗材第51-52页
            4.1.2.1 生化和分子生物学试剂第51页
            4.1.2.2 激素与抗生素第51页
            4.1.2.3 培养基的配制第51-52页
    4.2 方法第52-61页
        4.2.1 植物基因组DNA的提取第52-53页
        4.2.2 烟草种子的消毒及无菌苗的培养第53-54页
        4.2.3 农杆菌感受态细胞的制备第54页
        4.2.4 CmPP植物转化载体的构建第54-55页
            4.2.4.1 插入片段CmPP(SS)的制备第54-55页
            4.2.4.2 载体片段pBI121(SS)的制备第55页
            4.2.4.3 连接、转化及鉴定第55页
        4.2.5 质粒pBI121(CmPP)转化农杆菌感受态细胞及转化子鉴定第55-56页
        4.2.6 用于转化烟草的农杆菌的培养第56页
        4.2.7 烟草叶盘法转化及转基因烟草的无菌培养第56-57页
        4.2.8 CmPP转基因烟草植株的鉴定第57页
        4.2.9 CmPP转基因烟草植株的室外培养第57-58页
        4.2.10 CmPP当代转基因烟草植株的抗盐性初步分析第58页
        4.2.11 CmPP转基因烟草子一代植株的盐胁迫实验第58-59页
            4.2.11.1 胁迫前烟草小植株的培育第58页
            4.2.11.2 盐胁迫下叶片失绿实验第58页
            4.2.11.3 盐胁迫下植株生长第58-59页
        4.2.12 测定指标及方法第59-60页
            4.2.12.1 干物质含量的测定第59页
            4.2.12.2 叶片丙二醛(MDA)含量的测定第59页
            4.2.12.3 电解质渗透率的测定第59-60页
            4.2.12.4 叶绿素含量的测定第60页
            4.2.12.5 根系活力的测定第60页
            4.2.12.6 数据处理第60页
        4.2.13 其它所用方法第60-61页
    4.3 结果与分析第61-74页
        4.3.1 CmPP植物转化载体的制备第61-63页
        4.3.2 CmPP基因的烟草叶盘法转化及无菌培养第63-64页
        4.3.3 CmPP转基因烟草植株的鉴定第64-65页
        4.3.4 CmPP转基因烟草植株的室外培养第65-66页
        4.3.5 CmPP当代转基因烟草植株的抗盐性初步分析第66-68页
        4.3.6 CmPP转基因烟草子一代植株的抗盐性分析第68-74页
            4.3.6.1 盐胁迫叶片失绿测试第68页
            4.3.6.2 盐胁迫下的植株生长第68-69页
            4.3.6.3 盐胁迫下干物质含量的变化第69-71页
            4.3.6.4 盐胁迫下总叶绿素含量的变化第71-72页
            4.3.6.5 盐胁迫下根系活力的变化第72-73页
            4.3.6.6 盐胁迫下MDA含量及电解质渗透率的变化第73-74页
    4.4 小结第74-75页
第5章 总结与讨论第75-77页
参考文献第77-81页
攻读学位期间发表的学术论文和研究成果第81-82页
致谢第82页

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