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产肠毒素大肠杆菌(ETEC)F4菌毛特异性蛋白受体—猪源氨肽酶N的研究

中文摘要第3-7页
Abstract第7-10页
符号说明第16-18页
文献综述第18-33页
    一、产肠毒素大肠杆菌菌毛F4及其受体的研究进展第18-26页
        1 ETEC F4菌毛结构和功能第18-20页
        2 F4菌毛受体第20-26页
            2.1 F4相关受体的发现第21页
            2.2 F4相关受体基因的研究第21-24页
            2.3 F4相关受体的生化特性第24-25页
            2.4 F4特异性受体猪源氨肽酶N的研究第25-26页
    二、本研究的背景和意义第26页
    参考文献第26-33页
实验部分第33-158页
    第一章 猪产肠毒素大肠杆菌F4相关受体的初步分型第33-46页
        1 材料第34-35页
        2 方法第35-38页
            2.1 扩增MUC4 intron 7基因所需引物的设计第35页
            2.2 样品的制备第35页
            2.3 PCR扩增目的基因片段第35-36页
            2.4 酶切鉴定PCR产物第36页
            2.5 ETEC F4菌毛蛋白的制备与纯化第36-37页
            2.6 ETEC F4的生物素化处理第37页
            2.7 刷状缘大分子(BBV)细胞的制备第37-38页
            2.8 BBV蛋白的检测第38页
            2.9 BBV细胞的体外粘附及粘附抑制实验第38页
        3 结果第38-43页
            3.1 PCR扩增MUC4内含子7基因第38-39页
            3.2 酶切验证鉴定第39-41页
            3.3 F4菌毛蛋白的表达第41页
            3.4 Dot-blot分析BBV蛋白与生物素化F4菌毛的结合第41-42页
            3.5 猪的黏附表型鉴定结果第42-43页
        4 讨论第43-44页
        参考文献第44-46页
    第二章 猪源氨肽酶N基因的克隆和表达系统的构建第46-67页
        1 材料第47-48页
        2 方法第48-58页
            2.1 F4ac菌毛单抗的制备第48-50页
            2.2 扩增APN全长基因所需引物的设计第50-51页
            2.3 样品的制备第51页
            2.4 总RNA的提取第51页
            2.5 基因组DNA的去除第51页
            2.6 cDNA的制备第51-52页
            2.7 PCR扩增反应及产物纯化第52-54页
            2.8 化学感受态细胞的制备第54页
            2.9 连接与转化第54页
            2.10 阳性克隆的筛选及测序第54页
            2.11 表达载体的构建第54-55页
            2.12 APN蛋白的表达与纯化第55-57页
            2.13 APN多抗的制备第57页
            2.14 间接免疫荧光第57-58页
            2.15 Western-blot鉴定蛋白表达第58页
        3 结果第58-64页
            3.1 F4单抗的效价和特异性第58-59页
            3.2 PCR扩增第59-60页
            3.3 APN原核表达质粒的酶切鉴定和测序鉴定第60页
            3.4 APN真核表达质粒的酶切鉴定和测序鉴定第60-61页
            3.5 APN的原核表达和蛋白的纯化第61-63页
            3.6 APN多抗血清效价测定第63页
            3.7 APN蛋白表达的鉴定第63-64页
        4 讨论第64-65页
        参考文献第65-67页
    第三章 FaeG介导猪源氢肽酶N(APN)与产肠毒素大肠杆菌ETEC F4~+的黏附第67-89页
        1 材料第68页
        2 方法第68-77页
            2.1 引物设计第68-69页
            2.2 大肠杆菌F4模板的制备第69页
            2.3 大肠杆菌F4~+pBR322-fae(faeC to faeJ)重组菌的构建第69-71页
            2.4 细胞生长曲线测定(MTT实验)第71页
            2.5 细菌的黏附和黏附抑制实验第71-72页
            2.6 玻板凝集实验第72页
            2.7 APN蛋白与FaeG的相互作用第72-77页
        3 结果第77-85页
            3.1 pBR322-fae重组菌的鉴定第77-78页
            3.2 细胞生长曲线第78页
            3.3 黏附实验结果第78-80页
            3.4 黏附抑制实验结果第80-81页
            3.5 凝集反应结果第81-82页
            3.6 APN蛋白与FaeG蛋白的相互作用第82-85页
        4 讨论第85-86页
        参考文献第86-89页
    第四章 猪氨肽酶N对产肠毒素大肠杆菌(ETEC)F4黏附力的影响第89-112页
        1 材料第90-91页
        2 方法第91-101页
            2.1 引物设计第91-92页
            2.2 筛选G418最小致死浓度第92页
            2.3 RNAi干扰质粒的构建第92-94页
            2.4 筛选Blasticidin最小致死浓度第94页
            2.5 pEC129-APN过表达载体的构建第94-95页
            2.6 转染条件的优化第95-96页
            2.7 转染和筛选第96页
            2.8 设立阳性对照第96-97页
            2.9 APN蛋白活性检测第97-98页
            2.10 Western-blot鉴定APN表达第98页
            2.11 荧光定量检测APN mRNA的表达量第98-99页
            2.12 细胞的免疫组化实验第99-100页
            2.13 细菌的内化试验第100-101页
            2.14 细菌的黏附试验第101页
        3 结果第101-108页
            3.1 APN真核表达质粒的酶切鉴定和测序鉴定第101-102页
            3.2 荧光定量检测mRNA水平上APN的表达量第102-103页
            3.3 APN蛋白的酶活性检测第103页
            3.4 Western-blotting结果(以IPEC-J2细胞为例)第103-104页
            3.5 不同细胞系的免疫组化结果分析第104-105页
            3.6 细胞内化实验结果分析第105-106页
            3.7 黏附实验结果分析第106-108页
        4 讨论第108页
        参考文献第108-112页
    第五章 猪源氨肽酶N功能结合域的研究第112-142页
        1 材料第113-114页
        2 方法第114-121页
            2.1 APN基因的进化树分析和氨基酸比对第114-115页
            2.2 引物设计第115-116页
            2.3 APN BDΔ1/BDΔ2/BDΔ3/BDΔ4/BDΔ5蛋白的原核表达第116页
            2.4 Western-blot验证分区段蛋白的特异性第116-117页
            2.5 Pull-Down实验第117页
            2.6 多肽阵列第117-120页
            2.7 APN与FaeG蛋白功能性结合域的验证第120-121页
        3 结果第121-136页
            3.1 pET28a-APN BDΔ1/BD△2/BD△3/BD△4/BD△5的鉴定第121-122页
            3.2 SDS-PAGE和Western验证APN分段表达第122-123页
            3.3 多肽阵列结果第123-132页
            3.4 APN和FaeG蛋白的功能性结合域第132-136页
        4 讨论第136-138页
        参考文献第138-142页
    第六章 锌离子(Zn~(2+))对猪源氨肽酶功能的影响第142-158页
        1 材料第143-144页
        2 方法第144-148页
            2.1 荧光定量PCR引物设计第144-145页
            2.2 APN蛋白的活性检测第145页
            2.3 细菌黏附实验第145-146页
            2.4 细菌感染实验第146页
            2.5 Western-blot实验第146-147页
            2.6 荧光定量检测细胞因子的表达量第147页
            2.7 锌离子螯合缺陷培养实验第147页
            2.8 细胞因子的ELISA检测第147-148页
        3 结果第148-154页
            3.1 APN蛋白的活性检测结果第148页
            3.2 黏附实验结果第148-149页
            3.3 Western-blot实验结果第149-152页
            3.4 荧光定量检测细胞因子第152-153页
            3.5 细胞因子的ELISA检测结果第153-154页
        4 讨论第154-155页
        参考文献第155-158页
全文小结第158-160页
论文创新点第160-161页
致谢第161-162页
攻读学位期间发表的学术论文第162-163页
学术交流及报告第163页
主持和参与的研究课题第163-165页

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